中文摘要 | 第1-3页 |
Abstract | 第3-4页 |
目录 | 第4-7页 |
缩语表 | 第7-9页 |
第一部综述 | 第9-31页 |
1. 糖尿病 | 第10-16页 |
·1 型糖尿病 | 第10页 |
·2 型糖尿病 | 第10-11页 |
·运动与糖尿病 | 第11-13页 |
·运动与糖尿病的预防 | 第11-12页 |
·糖尿病的运动处方 | 第12-13页 |
·胰岛素信号传导通路 | 第13-15页 |
·PI-3K通路 | 第14页 |
·Ras-丝裂原激活蛋白激酶(MAPK)途径 | 第14页 |
·钙通道及其相关途径 | 第14-15页 |
·运动提高胰岛素敏感性的机制 | 第15-16页 |
·提高糖原的合成 | 第15页 |
·影响胰岛素的信号转导过程 | 第15-16页 |
·提高葡萄糖的转运 | 第16页 |
2. 甘丙肽 | 第16-18页 |
·GAL在体内的分布 | 第16-17页 |
·GAL在中枢神经系统的分布 | 第16-17页 |
·GAL在周围神经系统的分布 | 第17页 |
·GAL受体 | 第17页 |
·GAL受体的激动剂和拮抗剂 | 第17-18页 |
3. GAL与糖尿病 | 第18页 |
4 GAL与运动 | 第18-19页 |
5. 葡萄糖转运蛋白-4(GLUT4) | 第19-21页 |
·GLUT4与糖尿病 | 第19-20页 |
·运动与GLUT4和胰岛素抵抗 | 第20-21页 |
参考文献 | 第21-31页 |
第二部分 实验部分 | 第31-61页 |
1 材料与方法 | 第31-42页 |
·实验对象与分组 | 第31-32页 |
·大鼠侧脑室注射 | 第32页 |
·运动训练方案 | 第32-33页 |
·实验取材 | 第33页 |
·指标的测定 | 第33-42页 |
·血糖(BG)的测定 | 第33页 |
·ELISA法测量血清胰岛素浓度(INS)、甘丙肽浓度测定 | 第33-35页 |
·胰岛素试剂盒操作步骤 | 第33-34页 |
·甘丙肽试剂盒操作步骤 | 第34-35页 |
·正糖钳法测定大鼠胰岛素敏感性 | 第35页 |
·Western blot法测定大鼠骨骼肌GLUT4蛋白含量 | 第35-38页 |
·大鼠骨骼肌细胞膜的制备 | 第35-36页 |
·Western blot实验试剂 | 第36-37页 |
·Western blot步骤 | 第37-38页 |
·Real-time PCR测定骨骼肌中GLUT4 mRNA表达 | 第38-40页 |
·Real-time PCR实验试剂 | 第38页 |
·引物合成 | 第38-39页 |
·Total RNA的提取 | 第39-40页 |
·TransScript First-Strand cDNA反转录试剂盒操作步骤 | 第40页 |
·Real-time PCR试剂盒操作步骤 | 第40页 |
·大鼠骨骼肌免疫组化切片 | 第40-42页 |
·石蜡切片包埋 | 第41页 |
·免疫组化过程 | 第41-42页 |
·数据处理 | 第42页 |
2. 结果 | 第42-54页 |
·实验大鼠的一般表现及体重与摄食量测定结果 | 第42-45页 |
·实验大鼠一般观察 | 第42-43页 |
·大鼠体重与进食量测定 | 第43-45页 |
·大鼠血糖(BG)测定 | 第45-46页 |
·大鼠空腹血清胰岛素浓度(INS)测定 | 第46-48页 |
·大鼠血清甘丙肽浓度测定 | 第48-49页 |
·大鼠葡萄糖输注速率测定 | 第49-50页 |
·大鼠骨骼肌细胞GLUT4含量测定 | 第50-54页 |
·大鼠骨骼肌细胞GLUT4光密度值 | 第50-52页 |
·大鼠骨骼肌细胞内外膜GLUT4蛋白印迹 | 第52页 |
·大鼠骨骼肌GLUT4 mRNA测定 | 第52-53页 |
·大鼠骨骼肌免疫组化检查 | 第53-54页 |
3 讨论 | 第54-57页 |
·糖尿病大鼠的一般特征变化 | 第54-55页 |
·脑内M35与运动对糖尿病大鼠血糖的影响 | 第55页 |
·脑内M35与运动对糖尿病大鼠空腹血清胰岛素浓度的影响 | 第55页 |
·脑内M35与运动对糖尿病大鼠血清甘丙肽浓度的影响 | 第55-56页 |
·脑内M35与运动对葡萄糖输注速率的影响 | 第56页 |
·脑内M35与运动对糖尿病大鼠骨骼肌细胞GLUT4 mRNA表达水平及GLUT4膜转位的影响 | 第56-57页 |
4 结论与展望 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-61页 |
第三部分:致谢 | 第61-62页 |
第四部分:攻读硕士学位期间发表论文 | 第62-63页 |