中文摘要 | 第1-10页 |
英文摘要 | 第10-12页 |
1 前言 | 第12-26页 |
·食药用真菌多糖概述 | 第12-13页 |
·食药用真菌多糖在生物学中的重要作用 | 第12页 |
·食药用真菌多糖的研究背景 | 第12-13页 |
·真菌多糖的分离 | 第13-16页 |
·真菌多糖的提取 | 第13-14页 |
·真菌多糖的分离 | 第14-15页 |
·真菌多糖的纯化及纯度鉴定 | 第15-16页 |
·真菌多糖的生物学功能 | 第16-21页 |
·抗肿瘤作用、调节免疫功能 | 第17页 |
·抗菌、抗病毒作用 | 第17页 |
·降血脂、血糖、抗血栓作用 | 第17页 |
·抗氧化和抗衰老作用 | 第17-21页 |
·其他作用 | 第21页 |
·真菌多糖的构效关系 | 第21-22页 |
·多糖的一级结构与生物活性的关系 | 第22页 |
·多糖的高级结构与生物活性的关系 | 第22页 |
·真菌多糖的应用与展望 | 第22-23页 |
·真菌多糖的开发与利用 | 第22-23页 |
·前景与展望 | 第23页 |
·滑菇 | 第23-25页 |
·滑菇多糖的提取、纯化 | 第24页 |
·分离纯化与结构鉴定 | 第24页 |
·生物化学和分子生物学研究 | 第24-25页 |
·本实验的目的意义 | 第25-26页 |
2 材料与方法 | 第26-39页 |
·供试菌种 | 第26页 |
·培养基 | 第26页 |
·斜面种子培养基 | 第26页 |
·PDA 加富培养基 | 第26页 |
·液体基础培养基 | 第26页 |
·主要仪器设备及试剂 | 第26-27页 |
·主要仪器设备 | 第26-27页 |
·主要试剂 | 第27页 |
·试验方法 | 第27-39页 |
·滑菇的液体培养 | 第27页 |
·滑菇多糖的提取及含量测定 | 第27-28页 |
·滑菇多糖的提取及含量测定 | 第28页 |
·滑菇胞外多糖的提取优化 | 第28-29页 |
·滑菇胞内多糖的提取优化 | 第29-30页 |
·多糖的分离纯化 | 第30页 |
·多糖的含量测定:苯酚-硫酸法 | 第30-31页 |
·多糖体外抗氧化活性 | 第31-32页 |
·多糖的体内抗氧化试验 | 第32-37页 |
·多糖的分离纯化 | 第37-39页 |
3 结果与分析 | 第39-62页 |
·滑菇胞外多糖提取优化 | 第39-44页 |
·PB 试验结果 | 第39-40页 |
·响应面法优化 | 第40-44页 |
·滑菇胞内多糖提取优化 | 第44-49页 |
·PB 试验结果 | 第44-45页 |
·响应面法优化 | 第45-49页 |
·滑菇胞外与胞内多糖体外抗氧化结果 | 第49-52页 |
·还原力的测定 | 第49-50页 |
·清除羟基自由基的能力 | 第50页 |
·清除超氧阴离子自由基的能力 | 第50-51页 |
·清除 DPPH 的能力 | 第51-52页 |
·滑菇胞外多糖的体内抗氧化结果 | 第52-56页 |
·EPS 对小鼠组织和全血中 GSH-Px 活性的影响 | 第52页 |
·EPS 对小鼠组织和全血中 SOD 活性的影响 | 第52-53页 |
·EPS 对小鼠组织和全血中 ALT 活性的影响 | 第53-54页 |
·EPS 对小鼠组织和全血中 CAT 活性的影响 | 第54-55页 |
·EPS 对小鼠组织和全血中 MDA 含量的影响 | 第55-56页 |
·滑菇胞内多糖的体内抗氧化结果 | 第56-59页 |
·IPS 对小鼠组织和全血中 GSH-Px 活性的影响 | 第56页 |
·IPS 对小鼠组织和全血中 SOD 活性的影响 | 第56-57页 |
·IPS 对小鼠组织和全血中 ALT 活性的影响 | 第57-58页 |
·IPS 对小鼠组织和全血中 CAT 活性的影响 | 第58页 |
·IPS 对小鼠组织和全血中 MDA 含量的影响 | 第58-59页 |
·滑菇胞外多糖分离纯化 | 第59-60页 |
·DEAE-Cellulose 柱层析分离 | 第59-60页 |
·Sephadex G-100 柱层析分离 | 第60页 |
·滑菇胞内多糖分离纯化 | 第60-62页 |
·DEAE-Cellulose 柱层析分离 | 第60-61页 |
·Sephadex G-100 柱层析分离 | 第61-62页 |
4 讨论 | 第62-65页 |
5 结论 | 第65-67页 |
参考文献 | 第67-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第73页 |