| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 第一章 综述 | 第12-22页 |
| 1 创伤弧菌 | 第12-19页 |
| ·分类地位和生化特性 | 第12页 |
| ·分型及其危害 | 第12-14页 |
| ·毒力因子 | 第14-19页 |
| ·CPS | 第14-17页 |
| ·LPS | 第17页 |
| ·OMP | 第17-18页 |
| ·ECPs | 第18-19页 |
| 2 CPS疫苗 | 第19-20页 |
| 3 研究意义 | 第20-22页 |
| 第二章 创伤弧菌FJ03-X2菌株CPS的提取和纯度检测 | 第22-29页 |
| 1 材料和方法 | 第22-25页 |
| ·试验菌株 | 第22页 |
| ·方法 | 第22-25页 |
| ·细菌培养 | 第22-23页 |
| ·CPS提取 | 第23页 |
| ·细菌生物湿重测定 | 第23页 |
| ·CPS样品干重测定 | 第23页 |
| ·CPS样品检测 | 第23-25页 |
| ·蒽酮-硫酸法测多糖含量 | 第23-24页 |
| ·样品紫外吸收波长分析 | 第24页 |
| ·SDS-PAGE分析 | 第24页 |
| ·琼脂糖电泳分析 | 第24-25页 |
| 2 结果 | 第25-27页 |
| ·细菌生物湿重和CPS样品干重 | 第25页 |
| ·蒽酮-硫酸法测定CPS的多糖含量 | 第25页 |
| ·CPS样品的紫外吸收波长 | 第25-26页 |
| ·SDS-PAGE检测CPS样品中的杂蛋白和脂多糖 | 第26-27页 |
| ·琼脂糖电泳检测CPS样品中的核酸成分 | 第27页 |
| 3 讨论和小结 | 第27-29页 |
| 第三章 利用阿尔新蓝染色-双氨银染法检测创伤弧菌FJ03-X2 CPS | 第29-34页 |
| 1 材料与方法 | 第29-30页 |
| ·染色液和脱色液 | 第29页 |
| ·SDS-PAGE | 第29-30页 |
| ·两种阿尔新蓝染色程序 | 第30页 |
| ·阿尔新蓝-双氨银染法 | 第30页 |
| 2 结果 | 第30-32页 |
| ·两种阿尔新蓝染色程序的效果 | 第30-31页 |
| ·阿尔新蓝染色-双氨银染法 | 第31-32页 |
| 3 讨论和小结 | 第32-34页 |
| 第四章 创伤弧菌FJ03-X2 CPS对昆明小鼠的免疫原性 | 第34-38页 |
| 1 材料和方法 | 第34-35页 |
| ·试验菌株 | 第34页 |
| ·细菌培养 | 第34页 |
| ·全菌抗原制备 | 第34页 |
| ·鼠抗CPS血清制备 | 第34页 |
| ·凝集反应 | 第34-35页 |
| ·ELISA法 | 第35页 |
| ·Dot ELISA法 | 第35页 |
| 2 结果 | 第35-36页 |
| ·鼠抗CPS血清的抗体效价 | 第35-36页 |
| ·Dot ELISA法分析 | 第36页 |
| 3 讨论和小结 | 第36-38页 |
| 第五章 创伤弧菌FJ03-X2 CPS对欧洲鳗鲡的毒力和免疫功效 | 第38-43页 |
| 1 材料和方法 | 第38-40页 |
| ·试验菌株 | 第38页 |
| ·试验动物的饲养 | 第38页 |
| ·CPS对欧鳗的毒力试验 | 第38-39页 |
| ·免疫保护试验 | 第39-40页 |
| ·免疫 | 第39页 |
| ·采血 | 第39页 |
| ·预攻毒 | 第39页 |
| ·攻毒 | 第39-40页 |
| ·全菌抗原制备 | 第40页 |
| ·Dot ELISA法分析 | 第40页 |
| 2 结果 | 第40-42页 |
| ·CPS对欧鳗的毒力 | 第40页 |
| ·CPS对欧鳗的免疫保护效果 | 第40-41页 |
| ·Dot ELISA法分析 | 第41-42页 |
| 3 讨论和小结 | 第42-43页 |
| 总结 | 第43-44页 |
| 本研究的创新点 | 第44页 |
| 有待于进一步深入研究的问题 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-51页 |
| 附录 | 第51-56页 |
| 1 论文中所用的培养基、试剂 | 第51-55页 |
| 2 常用缩略词表 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
