| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-11页 |
| 1 绪论 | 第11-25页 |
| ·中药提取分离产物库 | 第11-13页 |
| ·中药化学成分提取分离方法与技术 | 第13-16页 |
| ·中药传统溶剂提取方法 | 第14-15页 |
| ·中药成分LCID-1 提取、分离、纯化及理化性质检测 | 第15-16页 |
| ·肝癌药物治疗及其新药筛选 | 第16-18页 |
| ·高通量药物筛选技术 | 第18-23页 |
| ·药物筛选模型 | 第18-19页 |
| ·肿瘤与细胞凋亡的关系 | 第19-20页 |
| ·中药诱导肿瘤细胞凋亡的研究现状 | 第20-22页 |
| ·高通量药物筛选库 | 第22-23页 |
| ·课题的研究目的及意义 | 第23-24页 |
| ·课题研究的主要技术路线 | 第24页 |
| ·主要创新点 | 第24-25页 |
| 2 中药提取和分离 | 第25-29页 |
| ·实验材料 | 第25页 |
| ·主要仪器 | 第25页 |
| ·主要试剂 | 第25页 |
| ·中药材料 | 第25页 |
| ·实验方法 | 第25-27页 |
| ·实验结果与分析 | 第27-29页 |
| 3 抗肝癌中药成分的高通量筛选 | 第29-42页 |
| ·实验材料 | 第30-31页 |
| ·主要仪器 | 第30页 |
| ·细胞株 | 第30页 |
| ·实验药物及主要试剂配制 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-32页 |
| ·人肝癌细胞株 HepG2 复苏 | 第31页 |
| ·人肝癌细胞株 HepG2 传代培养 | 第31页 |
| ·HepG2 细胞生长曲线测定(MTT 实验方法) | 第31-32页 |
| ·细胞活性检测(MTT 实验方法){初筛} | 第32页 |
| ·结果与分析 | 第32-42页 |
| ·HepG2 细胞生长曲线 | 第32-33页 |
| ·抑制HepG2 细胞增殖的药物高通量筛选 | 第33-36页 |
| ·MTT 法测定样品LCID-1 对HepG2 细胞活性的影响 | 第36-40页 |
| ·LCID-1 作用小白鼠原代肝细胞后细胞活力的检测 | 第40-42页 |
| 4 中药提取分离物LCID-1 作用HEPG2 后的形态学检测 | 第42-47页 |
| ·实验材料 | 第42-43页 |
| ·主要仪器 | 第42页 |
| ·主要试剂配制 | 第42-43页 |
| ·实验方法 | 第43页 |
| ·HepG2 细胞培养方法 | 第43页 |
| ·普通倒置相差显微镜观察细胞形态 | 第43页 |
| ·透射电镜观察细胞形态 | 第43页 |
| ·实验结果与分析 | 第43-47页 |
| ·普通倒置相差显微镜观察细胞形态 | 第43-45页 |
| ·透射电镜观察细胞形态 | 第45-47页 |
| 5 TUNEL 染色检测中药提取分离物LCID-1 作用HEPG 后的细胞凋亡 | 第47-50页 |
| ·实验材料 | 第47页 |
| ·实验试剂 | 第47页 |
| ·主要试剂配制 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-48页 |
| ·HepG2 细胞培养 | 第47页 |
| ·TUNEL 染色检测中药提取分离物LCID-1作用 HepG2 后的细胞凋亡 | 第47-48页 |
| ·实验结果与分析 | 第48-50页 |
| 6 RT-PCR 检测LCID-1 作用HEPG2 细胞后MRNA 转录 | 第50-54页 |
| ·实验材料 | 第50页 |
| ·主要仪器 | 第50页 |
| ·主要试剂 | 第50页 |
| ·实验方法 | 第50-52页 |
| ·HepG2 细胞培养 | 第50-51页 |
| ·RT-PCR 检测LCID-1 作用HepG2 细胞后m RNA 转录 | 第51-52页 |
| ·实验结果与分析 | 第52-54页 |
| 7 细胞免疫化学染色检测BCL-2、KI-67 表达 | 第54-58页 |
| ·实验材料 | 第54页 |
| ·主要仪器 | 第54页 |
| ·主要试剂 | 第54页 |
| ·实验方法 | 第54-55页 |
| ·HepG2 细胞培养 | 第54-55页 |
| ·细胞免疫化学染色检测bcl-2、Ki-67 表达 | 第55页 |
| ·实验结果与分析 | 第55-58页 |
| 8 结论与展望 | 第58-60页 |
| ·总结 | 第58页 |
| ·展望 | 第58-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-63页 |
| 附录 | 第63页 |
