摘要 | 第1-5页 |
ABSTRACT | 第5-11页 |
第一章 引言 | 第11-28页 |
1 高原鼢鼠概述及对对洞穴环境的适应机制 | 第11-15页 |
·鼢鼠分类概述 | 第11页 |
·高原鼢鼠的分布及生态习性 | 第11-12页 |
·高原鼢鼠洞道系统的生境特点 | 第12-13页 |
·地下鼠对低氧高二氧化碳环境的生理适应 | 第13-14页 |
·地下鼠对低氧高二氧化碳环境的分子适应 | 第14-15页 |
2 低氧诱导因子-1 的研究与应用进展 | 第15-22页 |
·HIF-1 的结构与生物学功能 | 第15-19页 |
·HIF-1 的结构 | 第15-16页 |
·HIF-1 的生物学功能研究进展 | 第16-19页 |
·HIF-1 的表达调控机制 | 第19-21页 |
·常氧条件下HIF-1α的调节 | 第19-20页 |
·缺氧状态下HIF-1α的调节 | 第20-21页 |
·地下鼠体内HIF-1α表达的研究 | 第21-22页 |
3 血红素氧合酶(Heme Oxygenase -1)的研究进展 | 第22-28页 |
·血红素氧合酶概述 | 第22-23页 |
·HO-1 的生物学特性及作用机制 | 第23-28页 |
·HO-1 的生物学特性 | 第23页 |
·HO-1 的作用机制 | 第23-28页 |
第二章 高原鼢鼠不同时期洞道环境的测定 | 第28-31页 |
1 材料与方法 | 第28-29页 |
·试验动物及采集地点 | 第28页 |
·主要仪器设备 | 第28页 |
·试验方法 | 第28-29页 |
·统计方法 | 第29页 |
2 结果与分析 | 第29页 |
3 讨论 | 第29-30页 |
4 结论 | 第30-31页 |
第三章 高原鼢鼠血液氧传输相关因子的测定 | 第31-35页 |
1 材料与方法 | 第31-32页 |
·试验动物 | 第31页 |
·动物处理 | 第31-32页 |
·试验方法 | 第32页 |
·动脉血液O_2 和CO_2 分压的测定 | 第32页 |
·血常规分析 | 第32页 |
·血浆CO_2 结合力的测定 | 第32页 |
·统计方法 | 第32页 |
2 结果与分析 | 第32页 |
3 讨论 | 第32-34页 |
4 结论 | 第34-35页 |
第四章 低氧高二氧化碳条件下高原鼢鼠HIF-1α及HO-1在mRNA 及蛋白水平的季节性表达变化 | 第35-53页 |
1 材料与方法 | 第35-43页 |
·动物来源 | 第35页 |
·动物处理 | 第35页 |
·组织总RNA 的提取 | 第35-36页 |
·试验用具去RNase 前处理 | 第35-36页 |
·组织总RNA 的提取 | 第36页 |
·总RNA 的质量、浓度检测与标化 | 第36页 |
·RNA 逆转录 | 第36-37页 |
·RT-PCR 半定量法测定对目的基因在mRNA 水平的表达 | 第37-42页 |
·目的基因及内参部分片段的序列测定 | 第37-41页 |
·RT-PCR 半定量检测各组织目的基因在mRNA 的季节性表达水平 | 第41-42页 |
·Western blotting 检测不同组织HIF-1α及HO-1 在蛋白水平的季节性表达 | 第42-43页 |
·组织总蛋白提取 | 第42页 |
·蛋白质浓度测定 | 第42页 |
·聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第42页 |
·蛋白质的转膜 | 第42页 |
·Western 印迹杂交 | 第42-43页 |
2 试验结果与分析 | 第43-49页 |
·目的基因克隆结果 | 第43-44页 |
·目的基因序列测定结果 | 第44-47页 |
·HIF-1α基因的部分cDNA 片段序列测定结果 | 第44-45页 |
·HO-1 基因的部分cDNA 片段序列测定结果 | 第45页 |
·GAPDH 基因部分cDNA 序列的测定结果 | 第45-47页 |
·HIF-1αmRNA 在不同组织中的季节性表达水平 | 第47页 |
·HIF-1α蛋白在不同组织中的季节性表达水平 | 第47-48页 |
·HO-1 mRNA 在不同组织中的季节性表达水平 | 第48页 |
·HO-1 蛋白在不同组织中的季节性表达水平 | 第48-49页 |
3 讨论 | 第49-52页 |
4 结论 | 第52-53页 |
第五章 全文总结 | 第53-54页 |
结论 | 第53页 |
有待于进一步解决的问题 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-65页 |
发表文章 | 第65页 |
参加的科研工作 | 第65-67页 |
致谢 | 第67页 |