| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-17页 |
| 1 绪论 | 第17-50页 |
| ·多糖的研究进展 | 第17-40页 |
| ·多糖的来源和种类 | 第18页 |
| ·多糖的分离提取技术 | 第18-19页 |
| ·多糖的精制技术 | 第19-20页 |
| ·多糖的分级纯化技术 | 第20-22页 |
| ·多糖的物化性质 | 第22-23页 |
| ·多糖的物理性质 | 第23页 |
| ·多糖的结构及分析 | 第23-26页 |
| ·多糖的生物学功能 | 第26-31页 |
| ·多糖的构效关系 | 第31-32页 |
| ·多糖的分子修饰 | 第32-38页 |
| ·多糖的国内外研究现状 | 第38-40页 |
| ·多糖研究的发展趋势 | 第40页 |
| ·荧光探针法表征DNA与其靶向分子的相互作用 | 第40-42页 |
| ·黑木耳多糖研究进展 | 第42-48页 |
| ·黑木耳多糖的提取、分离和纯化 | 第42-43页 |
| ·黑木耳多糖的结构分析 | 第43-44页 |
| ·黑木耳多糖的药理作用 | 第44-47页 |
| ·临床应用 | 第47页 |
| ·黑木耳多糖的构效关系 | 第47-48页 |
| ·黑木耳多糖的分子修饰 | 第48页 |
| ·展望 | 第48页 |
| ·本论文研究的背景、目的、内容 | 第48-50页 |
| ·研究背景 | 第48-49页 |
| ·研究目的意义 | 第49页 |
| ·研究内容 | 第49页 |
| ·主要技术路线 | 第49-50页 |
| 2 黑木耳多糖的提取与纯化 | 第50-55页 |
| ·试验仪器与药品 | 第50-51页 |
| ·试验仪器 | 第50页 |
| ·试验药品 | 第50-51页 |
| ·试验方法 | 第51-52页 |
| ·黑木耳多糖提取的工艺流程 | 第51页 |
| ·预处理 | 第51页 |
| ·黑木耳多糖的提取 | 第51页 |
| ·黑木耳多糖的鞣酸沉淀法脱蛋白 | 第51页 |
| ·黑木耳多糖的脱色 | 第51页 |
| ·多糖的测定 | 第51-52页 |
| ·蛋白质的测定： | 第52页 |
| ·黑木耳多糖的分级 | 第52页 |
| ·结果与讨论 | 第52-54页 |
| ·黑木耳多糖的提取 | 第52页 |
| ·黑木耳粗多糖的纯化 | 第52页 |
| ·黑木耳多糖的分级 | 第52-54页 |
| ·AAP理化性质 | 第54页 |
| ·讨论 | 第54页 |
| ·本章小结 | 第54-55页 |
| 3 黑木耳多糖硫酸酯化分子修饰 | 第55-62页 |
| ·试验仪器与药品 | 第55-56页 |
| ·试验仪器 | 第55页 |
| ·试验药品 | 第55-56页 |
| ·试验方法 | 第56-57页 |
| ·硫酸基(-OSO_4H)含量的测定—氯化钡-明胶比浊法 | 第56页 |
| ·黑木耳多糖硫酸酯化 | 第56-57页 |
| ·红外光谱分析 | 第57页 |
| ·结果与讨论 | 第57-61页 |
| ·氯磺酸与吡啶体积比对黑木耳多糖硫酸酯取代度的影响 | 第57页 |
| ·多糖溶液与酯化试剂的体积比对黑木耳多糖硫酸酯取代度的影响 | 第57-58页 |
| ·酯化温度对黑木耳多糖硫酸酯取代度的影响 | 第58页 |
| ·酯化时间对黑木耳多糖硫酸酯取代度的影响 | 第58-59页 |
| ·正交试验结果 | 第59页 |
| ·黑木耳多糖硫酸酯的红外光谱分析 | 第59-60页 |
| ·黑木耳多糖硫酸酯的制备 | 第60页 |
| ·讨论 | 第60-61页 |
| ·本章小结 | 第61-62页 |
| 4 黑木耳多糖与过渡金属离子鳌合物的制备 | 第62-71页 |
| ·材料与方法 | 第62-63页 |
| ·试剂 | 第62页 |
| ·仪器 | 第62-63页 |
| ·试验方法 | 第63-64页 |
| ·溶液中锌元素浓度的测定方法 | 第63页 |
| ·黑木耳多糖对不同锌盐的螯合能力研究 | 第63页 |
| ·黑木耳多糖与Zn(Ⅱ)螯合物的制备研究(静态法) | 第63-64页 |
| ·金属离子黑木耳多糖配合物的制备 | 第64页 |
| ·傅立叶红外光谱分析 | 第64页 |
| ·结果与讨论 | 第64-69页 |
| ·黑木耳多糖对不同锌盐的螯合能力 | 第64页 |
| ·黑木耳多糖与Zn(Ⅱ)螫合物的制备工艺 | 第64-67页 |
| ·鳌合物的红外光谱分析 | 第67-69页 |
| ·讨论 | 第69页 |
| ·本章小结 | 第69-71页 |
| 5 黑木耳多糖的超声波改性研究 | 第71-75页 |
| ·材料与方法 | 第71-72页 |
| ·试剂 | 第71页 |
| ·仪器 | 第71-72页 |
| ·试验方法 | 第72页 |
| ·黑木耳多糖的超声波改性方法 | 第72页 |
| ·葡萄糖醛酸的测定方法 | 第72页 |
| ·黏度测定 | 第72页 |
| ·结论与讨论 | 第72-74页 |
| ·超声波改性黑木耳多糖的性质 | 第72页 |
| ·不同时间超声波辐射对黑木耳多糖糖醛酸含量的影响 | 第72-73页 |
| ·超声波改性对黑木耳多糖黏度的影响 | 第73页 |
| ·讨论 | 第73-74页 |
| ·本章小结 | 第74-75页 |
| 6 硫酸酯化黑木耳多糖功能研究 | 第75-98页 |
| ·试验仪器与药品 | 第76-78页 |
| ·试验仪器 | 第76-77页 |
| ·试验材料 | 第77-78页 |
| ·试验方法 | 第78-82页 |
| ·硫酸酯化黑木耳多糖抑菌功能研究 | 第78-79页 |
| ·硫酸酯化黑木耳多糖清除自由基机理的研究 | 第79-80页 |
| ·硫酸酯化黑木耳多糖对小鼠免疫器官的影响 | 第80页 |
| ·硫酸酯化黑木耳多糖对人胃癌细胞823的作用 | 第80-81页 |
| ·硫酸酯化黑木耳多糖抗凝血作用研究 | 第81-82页 |
| ·结果与讨论 | 第82-96页 |
| ·硫酸酯化黑木耳多糖的抑菌功能 | 第82-84页 |
| ·硫酸酯化黑木耳多糖清除自由基机理的研究 | 第84-89页 |
| ·硫酸酯化黑木耳多糖对小鼠免疫器官的影响 | 第89-91页 |
| ·硫酸酯化黑木耳多糖对人胃癌细胞823的作用 | 第91-92页 |
| ·硫酸酯化黑木耳多糖抗凝血作用研究 | 第92-95页 |
| ·讨论 | 第95-96页 |
| ·本章小结 | 第96-98页 |
| 7 超声波改性黑木耳多糖清除自由基机理的研究 | 第98-110页 |
| ·试验仪器与药品 | 第99页 |
| ·试验仪器 | 第99页 |
| ·试验药品 | 第99页 |
| ·试验方法 | 第99-100页 |
| ·超声波改性黑木耳多糖清除自由基机理的研究 | 第99-100页 |
| ·超声波改性黑木耳多糖对小鼠免疫器官的影响 | 第100页 |
| ·结果与讨论 | 第100-108页 |
| ·超声波改性黑木耳多糖清除自由基机理的研究 | 第100-107页 |
| ·超声波改性黑木耳多糖对小鼠体重的影响 | 第107页 |
| ·超声波改性黑木耳多糖对小鼠免疫器官重量的影响 | 第107-108页 |
| ·讨论 | 第108页 |
| ·本章小结 | 第108-110页 |
| 8 黑木耳多糖及其分子修饰多糖与DNA作用的光谱研究 | 第110-114页 |
| ·材料与方法 | 第110页 |
| ·试剂 | 第110页 |
| ·仪器 | 第110页 |
| ·试验方法 | 第110-111页 |
| ·DNA和EB的配制 | 第110-111页 |
| ·黑木耳多糖及其分子修饰多糖对DNA紫外吸收光谱的影响 | 第111页 |
| ·黑木耳多糖及其分子修饰多糖对EB／DNA体系吸收光谱的影响 | 第111页 |
| ·结果与讨论 | 第111-113页 |
| ·黑木耳多糖及其分子修饰多糖对DNA紫外吸收光谱的影响 | 第111-112页 |
| ·黑木耳多糖及其分子修饰多糖对EB／DNA体系紫外吸收光谱的影响 | 第112-113页 |
| ·讨论 | 第113页 |
| ·本章小结 | 第113-114页 |
| 9 黑木耳多糖成膜性能研究 | 第114-118页 |
| ·材料与方法 | 第114页 |
| ·试剂 | 第114页 |
| ·仪器 | 第114页 |
| ·试验方法 | 第114-115页 |
| ·膜的制备 | 第114页 |
| ·膜性能表征 | 第114-115页 |
| ·结果与讨论 | 第115-117页 |
| ·共混膜的力学性能 | 第115-116页 |
| ·水蒸气透过率(WVTR)的测定 | 第116页 |
| ·讨论 | 第116-117页 |
| ·本章小结 | 第117-118页 |
| 结论 | 第118-120页 |
| 参考文献 | 第120-136页 |
| 附录 | 第136-144页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第144-145页 |
| 致谢 | 第145-146页 |
| 独创性声明 | 第146页 |
| 学位论文版权使用授权书 | 第146页 |
