前言 | 第1-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-27页 |
1.1 研究背景 | 第11-15页 |
1.1.1 多聚体微泡造影剂国外的研究进展 | 第11-12页 |
1.1.2 多聚体微泡造影剂国内的研究进展 | 第12-13页 |
1.1.3 靶向微泡超声造影剂的研究进展 | 第13-14页 |
1.1.4 多聚体微泡造影剂的研究意义 | 第14-15页 |
1.2 多聚体微泡超声造影剂的介绍 | 第15-18页 |
1.2.1 多聚体微泡超声造影剂的制备要求 | 第15-16页 |
1.2.2 多聚体类微泡造影剂 | 第16-17页 |
1.2.3 多聚体微泡制备方法 | 第17-18页 |
1.3 靶向多聚体微泡造影剂的介绍 | 第18-23页 |
1.3.1 靶向多聚体微泡造影剂的简介 | 第18-19页 |
1.3.2 多聚体微泡携载药物研究 | 第19-20页 |
1.3.3 多聚体微泡携载基因研究 | 第20-21页 |
1.3.4 携载方式 | 第21-23页 |
1.4 多聚体微泡造影剂的应用 | 第23-25页 |
1.4.1 超声显影 | 第23-24页 |
1.4.2 靶向应用 | 第24-25页 |
1.5 研究目的及主要工作 | 第25-27页 |
第二章 实验原理 | 第27-31页 |
2.1 超声波显像的原理 | 第27页 |
2.2 多聚体微泡造影剂增强显影的原理 | 第27-30页 |
2.3 多聚体微泡造影剂靶向作用原理 | 第30页 |
2.4 乳液聚合原理 | 第30-31页 |
第三章 多聚体微泡造影剂的制备 | 第31-56页 |
3.1 实验部分 | 第31-35页 |
3.1.1 实验试剂 | 第31-32页 |
3.1.2 实验仪器 | 第32-33页 |
3.1.3 多聚体微泡造影剂的制备方法 | 第33页 |
3.1.4 微泡粒径、分布及浓度的测定方法 | 第33-34页 |
3.1.5 造影剂显微图像采集及分析 | 第34页 |
3.1.6 体外显影实验 | 第34页 |
3.1.7 动物试验 | 第34-35页 |
3.1.8 单体转化率的测定 | 第35页 |
3.2 微泡造影剂的成分选择 | 第35-41页 |
3.2.1 单体的选择 | 第35-37页 |
3.2.2 乳化剂的选择 | 第37-40页 |
3.2.3 引发剂的选择 | 第40-41页 |
3.2.4 光引发剂的选择 | 第41页 |
3.3 多聚体微泡造影剂的制备研究 | 第41-50页 |
3.3.1 乳液分层问题 | 第42-44页 |
3.3.2 乳液中单体的聚合率:单体气味去除问题 | 第44-50页 |
3.4 微泡造影剂携载基因研究 | 第50-53页 |
3.4.1 材料与方法 | 第50-52页 |
3.4.2 分析讨论 | 第52-53页 |
3.5 微泡造影剂生物降解性研究 | 第53-56页 |
3.5.1 实验方法 | 第54页 |
3.5.2 实验装置 | 第54-56页 |
第四章 微泡造影剂结果分析 | 第56-76页 |
4.1 微泡造影剂粒径分布分析 | 第56-61页 |
4.1.1 搅拌速度对微泡粒径的影响 | 第56-57页 |
4.1.2 乳化剂剂量与微泡粒径关系 | 第57-59页 |
4.1.3 紫外引发时间与微泡粒径关系 | 第59-60页 |
4.1.4 存放时间与微泡粒径关系 | 第60-61页 |
4.2 微泡造影剂的体外超声显影分析 | 第61-67页 |
4.2.1 影响造影剂造影效果的因素 | 第61-62页 |
4.2.2 体外显影方法对超声显影的影响 | 第62-63页 |
4.2.3 体外超声显影实验分析 | 第63-67页 |
4.3 微泡造影剂的动物实验分析 | 第67-70页 |
4.3.1 心肌显影动物实验 | 第67-69页 |
4.3.2 胃肠道显影动物实验 | 第69-70页 |
4.4 微泡生物降解性分析 | 第70-76页 |
4.4.1 二氧化碳释放曲线及讨论分析 | 第70-72页 |
4.4.2 多聚体微泡造影剂在长时间的降解的COD情况 | 第72-74页 |
4.4.3 红外光谱法图像分析 | 第74-75页 |
4.4.4 结论 | 第75-76页 |
第五章 总结与展望 | 第76-78页 |
5.1 本文总结 | 第76-77页 |
5.2 实验中的创新点 | 第77页 |
5.3 关于制备多聚体微泡造影剂的进一步展望 | 第77-78页 |
参考文献 | 第78-82页 |
发表论文 | 第82-83页 |
致谢 | 第83-84页 |
西北工业大学学位论文知识产权声明书 | 第84页 |
西北工业大学学位论文原创性声明 | 第84页 |