中文摘要 | 第1-13页 |
英文摘要 | 第13-18页 |
1 文献综述 | 第18-39页 |
1.1 梨的科研与生产概况 | 第18-20页 |
1.2 梨品种选育概况 | 第20-21页 |
1.3 梨的芽变与选种 | 第21-24页 |
1.3.1 梨芽变的特点 | 第21-22页 |
1.3.1.1 芽变的多样性 | 第21页 |
1.3.1.2 芽变的重演性 | 第21-22页 |
1.3.1.3 芽变的稳定性 | 第22页 |
1.3.1.4 芽变的局限性与多效性 | 第22页 |
1.3.2 梨芽变的变异性状 | 第22-23页 |
1.3.2.1 形态突变 | 第22页 |
1.3.2.2 色泽突变 | 第22页 |
1.3.2.3 风味突变 | 第22-23页 |
1.3.2.4 成熟期突变 | 第23页 |
1.3.3 梨芽变的发生与机理 | 第23页 |
1.3.4 梨的芽变选种 | 第23-24页 |
1.4 果树变异系的鉴定 | 第24-39页 |
1.4.1 形态学鉴定 | 第26页 |
1.4.2 细胞学鉴定 | 第26页 |
1.4.3 生理生化鉴定 | 第26-28页 |
1.4.4 DNA分子标记鉴定 | 第28-39页 |
1.4.4.1 RAPD | 第31-35页 |
1.4.4.2 AFLP | 第35-37页 |
1.4.4.3 RFLP | 第37页 |
1.4.4.4 SSR | 第37-39页 |
2 引言 | 第39-43页 |
2.1 金花梨栽培现状与问题 | 第39页 |
2.2 研究的目的意义 | 第39-41页 |
2.3 实验设计与技术路线 | 第41页 |
2.4 主要研究内容 | 第41-42页 |
2.5 研究目标 | 第42-43页 |
3 材料与方法 | 第43-51页 |
3.1 金花梨与金川雪梨的性状比较及金花梨的生态适应性调查 | 第43页 |
3.2 金花梨芽变单系的生物学特性调查 | 第43-44页 |
3.2.1 调查材料 | 第43页 |
3.2.2 调查方法 | 第43-44页 |
3.3 同工酶分析 | 第44页 |
3.4 梨基因组总DNA的提取 | 第44-48页 |
3.4.1 提取材料 | 第44-45页 |
3.4.2 提取方法 | 第45-47页 |
3.4.3 提取液配方及其配制 | 第47页 |
3.4.4 DNA纯度及含量测定 | 第47-48页 |
3.5 梨RAPD分析及其技术体系的建立 | 第48-51页 |
3.5.1 材料 | 第48页 |
3.5.2 主要试剂和仪器 | 第48-49页 |
3.5.3 方法 | 第49页 |
3.5.4 DNA质量的检测 | 第49页 |
3.5.5 PCR扩增 | 第49-50页 |
3.5.6 数据分析 | 第50-51页 |
4 结果与分析 | 第51-83页 |
4.1 金花梨与金川雪梨的性状比较 | 第51-52页 |
4.1.1 金花梨的特征特性 | 第51页 |
4.1.2 金川雪梨的特征特性 | 第51-52页 |
4.1.3 金花梨与金川雪梨的特征特性比较 | 第52页 |
4.2 金花梨的生态适应性调查 | 第52-54页 |
4.2.1 金花梨在四川各地的表现 | 第52-53页 |
4.2.2 金花梨在其它省区的表现 | 第53-54页 |
4.2.3 金花梨的适应性 | 第54页 |
4.3 金花梨芽变单系的初选过程 | 第54页 |
4.4 金花梨芽变单系的生长与结果比较 | 第54-55页 |
4.5 金花梨芽变单系的果实外观和内质比较 | 第55-56页 |
4.6 果实品质指标聚类分析 | 第56-58页 |
4.7 过氧化物同工酶分析 | 第58-59页 |
4.8 梨基因组DNA的提取方法和提取材料的探讨 | 第59-62页 |
4.8.1 梨幼嫩叶基因组总DNA的提取和质量评估 | 第59-61页 |
4.8.2 梨成熟叶基因组总DNA的提取和质量评估 | 第61-62页 |
4.9 梨RAPD技术体系的建立与遗传多样性研究 | 第62-73页 |
4.9.1 PCR扩增技术体系的建立 | 第62-68页 |
4.9.1.1 PCR扩增程序的优化结果 | 第62-65页 |
4.9.1.2 反应条件的优化结果 | 第65-68页 |
4.9.2 梨的遗传多样性研究 | 第68-73页 |
4.9.2.1 DNA扩增结果 | 第68-71页 |
4.9.2.2 聚类结果 | 第71-73页 |
4.10 金花梨变异单系的RAPD分析鉴定 | 第73-76页 |
4.11 遗传差异和聚类分析 | 第76-79页 |
4.12 金花梨变异优系的生物学性状描述 | 第79-83页 |
5 讨论 | 第83-91页 |
5.1 环境条件对金花梨变异单系生物学性状的影响 | 第83页 |
5.2 金花梨变异单系与金花梨的某些性状差异 | 第83-84页 |
5.3 金花梨优变单系的确定 | 第84-85页 |
5.4 有关过氧化物(POD)同工酶的分析 | 第85页 |
5.5 DNA提取的有关问题 | 第85-88页 |
5.5.1 提取方法的探讨 | 第85-86页 |
5.5.2 防止氧化的探索 | 第86-88页 |
5.6 RAPD的稳定性 | 第88页 |
5.7 关于梨的亲缘关系和遗传多样性 | 第88-89页 |
5.8 加速选种进程注重繁育推广 | 第89-91页 |
6 结论 | 第91-93页 |
6.1 金花梨18个芽变单系发生了多种性状变异 | 第91页 |
6.2 金花梨及其变异单系的POD同工酶酶谱出现差异 | 第91页 |
6.3 探明了以梨幼叶和成熟叶为材料提取DNA的方法并克服了氧化问题 | 第91-92页 |
6.4 建立了梨RAPD分析技术体系 | 第92页 |
6.5 梨DNA具有多态性,其遗传具有多样性,梨是遗产背景复杂、种质资源丰富的园艺植物 | 第92页 |
6.6 采用RAPD技术鉴定了金花梨的18个变异单系 | 第92页 |
6.7 探讨出了一条金花梨提纯选优的切实可行的途径,初步筛选出8个优变单系,为筛选系列新品系(品种)奠定了基础 | 第92-93页 |
附: 本论文的创新点 | 第93-94页 |
7 参考文献 | 第94-106页 |
8 附录 | 第106-113页 |
9 在读期间发表论文及参加的科研课题 | 第113-115页 |
10 致谢 | 第115-116页 |