| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 第一章 文献研究 | 第11-21页 |
| 1 青天葵研究 | 第11-15页 |
| ·本草考证 | 第11页 |
| ·品种鉴别研究 | 第11-12页 |
| ·生境分布 | 第12页 |
| ·组织培养研究进展 | 第12-15页 |
| 2 植物细胞培养 | 第15-17页 |
| ·植物细胞培养概述 | 第15页 |
| ·细胞悬浮培养方法 | 第15-16页 |
| ·细胞悬浮培养的应用 | 第16-17页 |
| 3 植物原生质体研究进展 | 第17-19页 |
| ·原生质体概述 | 第17页 |
| ·原生质体技术的应用 | 第17-18页 |
| ·兰科植物原生质体研究进展 | 第18-19页 |
| 4. 讨论 | 第19-21页 |
| 第二章 组织培养 | 第21-42页 |
| 第一节 固体培养 | 第21-26页 |
| ·材料 | 第21-22页 |
| ·实验方法 | 第22-23页 |
| ·结果与分析 | 第23-24页 |
| ·讨论 | 第24-26页 |
| 第二节 悬浮培养 | 第26-35页 |
| ·材料 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26-30页 |
| ·结果与分析 | 第30-34页 |
| ·讨论 | 第34-35页 |
| 第三节 组培物与栽培植株比较 | 第35-42页 |
| ·材料 | 第35-36页 |
| ·实验方法 | 第36-37页 |
| ·结果与分析 | 第37-39页 |
| ·讨论 | 第39-42页 |
| 第三章 原生质体分离条件 | 第42-49页 |
| 1 材料 | 第42-43页 |
| ·试验材料 | 第42页 |
| ·试剂 | 第42页 |
| ·仪器 | 第42-43页 |
| 2 实验方法 | 第43-44页 |
| ·青天葵叶片表皮细胞等渗浓度的确定 | 第43页 |
| ·最佳酶液组合、酶解时间的确定 | 第43页 |
| ·分离条件的优化 | 第43-44页 |
| 3 结果与分析 | 第44-47页 |
| ·青天葵叶片表皮细胞等渗浓度的确定 | 第44页 |
| ·最佳酶液组合、酶解时间的确定 | 第44-46页 |
| ·分离条件的优化 | 第46-47页 |
| 4 讨论 | 第47-49页 |
| 第四章 结语 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 附录 | 第55-66页 |
| 附录Ⅰ 附图 | 第55-61页 |
| 附录Ⅱ 相关植物激素的配制 | 第61页 |
| 附录Ⅱ-1 6-BA(1.0mg·L-1×200)的制备 | 第61页 |
| 附录Ⅱ-2 NAA(1.0mg·L-1×200)的制备 | 第61页 |
| 附录Ⅱ-3 2,4-D(1.0mg·L-1×200)的制备 | 第61页 |
| 附录Ⅲ 丙二醛(MDA)含量测定试剂盒使用说明书 | 第61-63页 |
| 附录Ⅳ 植物过氧化物酶(POD)ELISA试剂盒使用说明书 | 第63-66页 |
| 获资助项目 | 第66-67页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
