| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 1 引言 | 第8-16页 |
| ·果蝇作为模式生物的优势 | 第8-9页 |
| ·模式生物模型与传统药物筛选 | 第9-10页 |
| ·Scrib 与肿瘤的关系 | 第10-12页 |
| ·1Scrib 蛋白 | 第10-11页 |
| ·Scrib 是肿瘤抑制因子 | 第11-12页 |
| ·在果蝇中scribble 基因的研究 | 第11页 |
| ·hScrib 是上皮组织中的抑癌基因产物 | 第11-12页 |
| ·肿瘤与细胞凋亡 | 第12页 |
| ·JNK途径与scrib肿瘤模型的关系 | 第12-14页 |
| ·果蝇药物筛选模型的建立 | 第14-15页 |
| ·研究内容 | 第15页 |
| ·本实验的意义 | 第15-16页 |
| 2 材料与方法 | 第16-25页 |
| ·实验动物 | 第16页 |
| ·试剂与仪器 | 第16页 |
| ·试验方法 | 第16-25页 |
| ·培养基制备 | 第16-21页 |
| ·普通培养基制备 | 第16页 |
| ·土豆加药培养基的制备 | 第16-17页 |
| ·DMSO 空白对照培养基的制备 | 第17页 |
| ·备选阳性药物的加药培养基的制备 | 第17-18页 |
| ·初筛药物培养基的制备 | 第18-21页 |
| ·编号为B3，B4，C3 合成药物培养基的制备 | 第18页 |
| ·编号IMM-NK-001--IMM-NK-009 合成药物培养基的制备 | 第18-21页 |
| ·实验方法 | 第21页 |
| ·处女蝇的挑选 | 第21页 |
| ·杂交试验 | 第21页 |
| ·药物作用实验 | 第21页 |
| ·检测方法 | 第21-25页 |
| ·普通显微镜观察 | 第21页 |
| ·荧光显微镜观察 | 第21页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第21-22页 |
| ·荧光酶标仪检测 | 第22页 |
| ·Western Blot 检测结果 | 第22-25页 |
| 3 结果与分析 | 第25-51页 |
| ·土豆培养基与普通玉米培养基的对照 | 第25-26页 |
| ·杂交实验结果 | 第26-46页 |
| ·各种系表型特征及特性 | 第26-28页 |
| ·杂交结果 | 第28页 |
| ·荧光显微镜观察结果 | 第28-29页 |
| ·SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)结果 | 第29-30页 |
| ·Western blot 实验结果 | 第30-31页 |
| ·荧光酶标仪检测结果 | 第31-46页 |
| ·5min 内与时间相关的图谱 | 第31-33页 |
| ·480 激发光，51011m 做发射光光谱 | 第33-34页 |
| ·绿色荧光蛋白荧光370－490 激发光光谱，发射光为510 nm 的实验.. | 第34-41页 |
| ·采用基本的破碎体系 | 第34-36页 |
| ·筛选均有绿色荧光蛋白表达的100 只最为浓度的最大阈值，对破碎体系做激发光光谱 | 第36-39页 |
| ·读孔板中100μL、200μL 浓度梯度做激发光光谱试验 | 第39-41页 |
| ·480 nm 激发，510 nm 发射的荧光强度数值 | 第41-44页 |
| ·基本的破碎体系，480 nm 激发，510 nm 发射 | 第41-42页 |
| ·筛选100 只绿色荧光蛋白表达的蛹为最大的浓度阈值 | 第42-43页 |
| ·蛹经过筛选都有绿色荧光蛋白表达，取样量的梯度实验 | 第43-44页 |
| ·395 nm 激发，510 nm 发射的荧光强度值 | 第44-46页 |
| ·蛹的个数对读孔板中绿色荧光蛋白的浓度的影响 | 第44-45页 |
| ·395nm 定点激发，510nm 发射光荧光强度 | 第45-46页 |
| ·药物培养结果 | 第46-51页 |
| ·初筛药物作用的统计结果 | 第47页 |
| ·IMM-NK-001 到IMM-NK-009 样品筛选结果 | 第47-50页 |
| ·Sorbitol 药物筛选结果 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51-53页 |
| ·关于给药方法 | 第51页 |
| ·关于果蝇药物筛选模型 | 第51-53页 |
| 5 结论 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 作者简历 | 第59页 |
