| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 1 前言 | 第13-25页 |
| ·光动力学作用机制的研究 | 第14-15页 |
| ·光动力学的宏观机制 | 第14-15页 |
| ·光动力学的微观机制 | 第15页 |
| ·光动力学中光源和光敏剂的研究进展 | 第15-17页 |
| ·光源的研究进展 | 第15-16页 |
| ·光敏剂的研究进展 | 第16-17页 |
| ·光动力学疗法与细胞凋亡 | 第17-23页 |
| ·细胞凋亡途径 | 第19-21页 |
| ·Ca~(2+)、Caspase-3、Caspase-8 及端粒酶在细胞凋亡中的作用 | 第21-23页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第23-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-35页 |
| ·材料 | 第25-28页 |
| ·细胞系 | 第25页 |
| ·主要化学试剂及生物制剂 | 第25页 |
| ·主要仪器与耗材 | 第25-26页 |
| ·主要试剂配制 | 第26-28页 |
| ·实验方法 | 第28-33页 |
| ·细胞的复苏、传代与冻存 | 第28页 |
| ·细胞的一般形态学观察及细胞计数 | 第28-29页 |
| ·光敏剂准备 | 第29页 |
| ·激光照射 | 第29页 |
| ·实验分组 | 第29-30页 |
| ·MTT 法确定HMME-PDT 对犬乳腺瘤细胞的体外最佳实验参数 | 第30-31页 |
| ·细胞凋亡的形态学检测 | 第31-32页 |
| ·DNA LADDER 检测细胞凋亡 | 第32页 |
| ·Annexin V-FITC／PI 双染色流式细胞术检测细胞凋亡 | 第32页 |
| ·Fura-2 AM(钙离子荧光探针)法检测细胞内游离Ca2+浓度 | 第32页 |
| ·细胞内Caspase-3 和Caspase-8 活性的检测 | 第32-33页 |
| ·TRAP-PCR 银染法检测端粒酶活性 | 第33页 |
| ·试验数据的分析与统计 | 第33-35页 |
| 3 结果 | 第35-48页 |
| ·MTT 法确定HMME-PDT 抑制犬乳腺瘤细胞生长的最佳实验参数 | 第35-37页 |
| ·细胞的形态学观察结果 | 第37-41页 |
| ·吉姆萨（Giemsa）染色观察细胞凋亡形态的结果 | 第37-38页 |
| ·AO/EB 双荧光染色的检测结果 | 第38-40页 |
| ·透射电镜观察细胞凋亡的超微形态学的结果 | 第40-41页 |
| ·DNA LADDER 法检测细胞凋亡的结果 | 第41-42页 |
| ·Annexin V-FITC／PI 双染色流式细胞术检测细胞凋亡的结果 | 第42-44页 |
| ·细胞内游离Ca~(2+)浓度测定结果 | 第44-45页 |
| ·细胞内Caspase-8 活性的检测的结果 | 第45-46页 |
| ·细胞内Caspase-3 活性的检测的结果 | 第46-47页 |
| ·TRAP-PCR 银染法端粒酶活性检测的结果 | 第47-48页 |
| 4 讨论 | 第48-54页 |
| ·光敏剂的选择 | 第48页 |
| ·光源的选择 | 第48-49页 |
| ·MTT 法检测HMME-PDT 对犬乳腺肿瘤细胞株CHMm 的抑制作用 | 第49-50页 |
| ·HMME-PDT 诱导CHMm 细胞凋亡 | 第50-51页 |
| ·细胞内游离Ca~(2+)浓度在HMME-PDT 诱导细胞凋亡过程中的变化及作用 | 第51-52页 |
| ·细胞内Caspase-8 和Caspase-3 活性在HMME-PDT 诱导细胞凋亡过程中的变化及作用 | 第52-53页 |
| ·细胞内端粒酶活性在HMME-PDT 诱导细胞凋亡过程中的变化及作用 | 第53-54页 |
| 5 结论 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 附录 | 第60-61页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第61页 |
