中文摘要 | 第7-8页 |
英文摘要 | 第8-9页 |
第一部分 乳小鼠心肌梗死后再生心肌的磷酸化蛋白组学与激酶调控网络解析 | 第9-54页 |
前言 | 第9-11页 |
材料与方法 | 第11-26页 |
1 实验动物 | 第11页 |
2 主要实验试剂 | 第11-12页 |
3 主要实验设备 | 第12-14页 |
4 主要手术器械 | 第14-15页 |
5 实验动物手术操作与取材 | 第15-16页 |
6 定量蛋白组学与磷酸化蛋白组学样本制备 | 第16页 |
7 LC-MS/MS分析方法与数据处理 | 第16-17页 |
8 生物信息学分析 | 第17-18页 |
9 心脏组织石蜡标本切片制作 | 第18页 |
10 TTC染色 | 第18-19页 |
11 HE与 Masson染色 | 第19页 |
12 免疫荧光 | 第19-20页 |
13 免疫印迹 | 第20-22页 |
14 逆转录与实时荧光定量PCR | 第22-25页 |
15 小动物超声检查 | 第25页 |
16 统计学分析 | 第25-26页 |
结果 | 第26-46页 |
1 成功实施新生小鼠LAD结扎诱导心肌梗死手术 | 第26-27页 |
2 新生小鼠心梗损伤后完全再生修复 | 第27-29页 |
3 新生小鼠心梗损伤后刺激心肌细胞增殖 | 第29-31页 |
4 定量蛋白组学分析 | 第31-34页 |
5 定量磷酸化蛋白组学分析 | 第34-37页 |
6 基于iGPS算法预测激酶 | 第37-41页 |
7 定量磷酸化组学与激酶验证 | 第41-46页 |
讨论 | 第46-48页 |
结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-54页 |
第二部分 CHK1激酶通过mTORC1/P70S6K通路促进梗死后心肌的再生修复.. | 第54-97页 |
前言 | 第54-57页 |
材料与方法 | 第57-69页 |
1 实验动物 | 第57页 |
2 主要实验试剂 | 第57-58页 |
3 实验动物手术操作与取材 | 第58-59页 |
4 原代乳小鼠心肌细胞提取与培养 | 第59-60页 |
5 病毒构建与处理方法 | 第60-61页 |
6 心脏组织冰冻标本切片制作 | 第61页 |
7 免疫荧光 | 第61-62页 |
8 EDU处理与染色 | 第62-64页 |
9 WGA染色 | 第64页 |
10 Tunel染色 | 第64-65页 |
11 免疫印迹 | 第65-66页 |
12 免疫沉淀 | 第66-67页 |
13 蔗糖密度梯度分离多聚核糖体 | 第67页 |
14 逆转录与实时荧光定量PCR | 第67-68页 |
15 小动物超声检查 | 第68页 |
16 统计学分析 | 第68-69页 |
结果 | 第69-89页 |
1 过表达CHK1激酶促进原代乳小鼠心肌细胞增殖 | 第69-71页 |
2 敲低CHK1激酶抑制原代乳小鼠心肌细胞增殖 | 第71-73页 |
3 心肌特异性过表达CHK1激酶延长新生心肌细胞增殖时间窗 | 第73-76页 |
4 心肌特异性敲低CHK1激酶抑制新生心肌损伤后再生能力 | 第76-79页 |
5 CHK1激酶促进成年小鼠心梗后心肌再生修复 | 第79-82页 |
6 CHK1激酶通过调节mTORC1/P70S6K通路参与心肌再生修复 | 第82-89页 |
讨论 | 第89-92页 |
结论 | 第92-93页 |
参考文献 | 第93-97页 |
文献综述 新生乳小鼠心脏再生的最新研究进展 | 第97-108页 |
参考文献 | 第103-108页 |
附录 | 第108-111页 |
英文缩略词表 | 第108-109页 |
个人简历 | 第109-111页 |
攻读学位期间发表文章情况 | 第111-112页 |
致谢 | 第112-113页 |