| 中文摘要 | 第4-6页 |
| 英文摘要 | 第6-12页 |
| 缩略词及中英文对照表 | 第12-13页 |
| 第一章 梅毒螺旋体tp0574和兔hprt基因实时荧光定量PCR方法的建立及性能评价 | 第13-48页 |
| 1 引言 | 第13-14页 |
| 2 实验材料 | 第14-17页 |
| 2.1 主要仪器 | 第14页 |
| 2.2 主要试剂和耗材 | 第14-16页 |
| 2.3 梅毒螺旋体菌株来源 | 第16页 |
| 2.4 实验动物 | 第16页 |
| 2.5 正常兔血清制备 | 第16-17页 |
| 3 实验方法与步骤 | 第17-31页 |
| 3.1 tp0574和hprt质粒构建和鉴定 | 第17-26页 |
| 3.2 tp0574和hprt质粒标准品qPCR建立标准曲线 | 第26-28页 |
| 3.3 tp0574和hprt基因敏感性与特异性试验 | 第28-31页 |
| 4 实验结果 | 第31-46页 |
| 4.1 tp0574和hprt质粒构建和鉴定结果 | 第31-42页 |
| 4.2 tp0574和hprt质粒标准曲线建立 | 第42-45页 |
| 4.3 tp0574和hprt基因敏感性和特异性的检测 | 第45-46页 |
| 5 讨论 | 第46-47页 |
| 6 结论 | 第47-48页 |
| 第二章 实时荧光定量PCR检测tp0574 DNA和mRNA载量对早期梅毒活动性及疗效评价 | 第48-79页 |
| 1 引言 | 第48-49页 |
| 2 实验材料 | 第49-53页 |
| 2.1 主要仪器设备 | 第49-50页 |
| 2.2 主要实验试剂耗材 | 第50-52页 |
| 2.3 梅毒螺旋体菌株制备 | 第52-53页 |
| 3 实验方法和步骤 | 第53-59页 |
| 3.1 实验分组 | 第53页 |
| 3.2 背部接种模型构建 | 第53-54页 |
| 3.3 血清学检测 | 第54-55页 |
| 3.4 皮损DNA提取 | 第55-56页 |
| 3.5 皮损RNA提取 | 第56-57页 |
| 3.6 脏器DNA和RNA提取 | 第57-58页 |
| 3.7 ABI Viia7 qPCR检测皮损和脏器中tp0574 DNA载量绝对拷贝数 | 第58页 |
| 3.8 ABI Viia7 qPCR检测皮损和脏器中tp0574 mRNA绝对拷贝数 | 第58页 |
| 3.9 脏器标本转种 | 第58页 |
| 3.10 统计分析 | 第58页 |
| 3.11 动物伦理 | 第58-59页 |
| 4 实验结果 | 第59-72页 |
| 4.1 梅毒动物模型建立 | 第59-60页 |
| 4.2 T.pallidum感染和治疗过程中皮损的变化 | 第60-61页 |
| 4.3 T.pallidum感染和治疗过程中血清RPR滴度变化 | 第61-62页 |
| 4.4 T.pallidum感染和治疗过程中RPR滴度四倍下降情况 | 第62-66页 |
| 4.5 T.pallidum感染和治疗过程中皮损tp0574 DNA载量变化 | 第66页 |
| 4.6 T.pallidum感染和治疗过程中皮损tp0574 mRNA表达变化 | 第66-69页 |
| 4.7 暗示野显微镜检测皮损中的T.Pallidum | 第69页 |
| 4.8 T.pallidum DNA和mRNA不同脏器的分布情况及兔感染性试验 | 第69-72页 |
| 4.9 T.pallidum mRNA作为梅毒活动性诊断的敏感性和特异性分析 | 第72页 |
| 5 讨论 | 第72-78页 |
| 6 结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 攻读硕士期间的研究成果 | 第89-90页 |
