| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 英文缩写表 | 第22-24页 |
| 第一章 绪论 | 第24-55页 |
| 1.1 纳米通道 | 第24-31页 |
| 1.1.1 纳米通道的分类 | 第24页 |
| 1.1.2 检测原理 | 第24-25页 |
| 1.1.3 生物纳米通道 | 第25-27页 |
| 1.1.4 固态纳米通道 | 第27-28页 |
| 1.1.5 混合纳米通道 | 第28-29页 |
| 1.1.6 阳极氧化铝纳米通道 | 第29-31页 |
| 1.1.6.1 AAO纳米多孔膜的制备和结构 | 第29-31页 |
| 1.1.6.2 AAO应用于传感的属性 | 第31页 |
| 1.2 固态纳米通道的应用 | 第31-42页 |
| 1.2.1 固态纳米通道应用于生物传感的电动力学效应 | 第31-34页 |
| 1.2.1.1 双电层 | 第31-32页 |
| 1.2.1.2 导电性 | 第32页 |
| 1.2.1.3 电渗流 | 第32页 |
| 1.2.1.4 离子整流效应 | 第32-33页 |
| 1.2.1.5 电阻式脉冲传感 | 第33页 |
| 1.2.1.6 分离、筛选和样品富集 | 第33-34页 |
| 1.2.2 刺激-响应门控装置的应用 | 第34-35页 |
| 1.2.3 能量转换的应用 | 第35-36页 |
| 1.2.4 手性识别的应用 | 第36页 |
| 1.2.5 水运输以及海水淡化的应用 | 第36-37页 |
| 1.2.6 固态纳米孔在检测方面的应用 | 第37-42页 |
| 1.2.6.1 核酸的检测 | 第37-39页 |
| 1.2.6.2 金属离子的检测 | 第39页 |
| 1.2.6.3 H_2O_2的检测 | 第39-40页 |
| 1.2.6.4 蛋白质的检测 | 第40页 |
| 1.2.6.5 细菌和病毒的检测 | 第40-41页 |
| 1.2.6.6 农药及其他分子的检测 | 第41-42页 |
| 1.3 酶在纳米空间中的应用 | 第42-48页 |
| 1.3.1 酶的催化及应用 | 第42-44页 |
| 1.3.2 酶的限制形式以及催化反应 | 第44-46页 |
| 1.3.3 固态纳米通道内酶活性检测 | 第46-48页 |
| 1.4 葡萄糖的检测 | 第48-51页 |
| 1.4.1 传统检测方法 | 第48-49页 |
| 1.4.2 比色法 | 第49-50页 |
| 1.4.3 纳米通道技术检测葡萄糖 | 第50-51页 |
| 1.5 国内外研究中存在的问题 | 第51-52页 |
| 1.6 本文研究目的和意义 | 第52-55页 |
| 1.6.1 研究内容 | 第53-54页 |
| 1.6.2 技术路线图 | 第54-55页 |
| 第二章 酶催化诱导纳米通道内聚合物生长及酶动力学研究 | 第55-76页 |
| 2.1 引言 | 第55-57页 |
| 2.2 试验部分 | 第57-59页 |
| 2.2.1 材料和设备 | 第57页 |
| 2.2.2 在不同膜片上修饰HRP | 第57页 |
| 2.2.3 检测池组装 | 第57-59页 |
| 2.2.4 离子电流测量 | 第59页 |
| 2.2.5 酶催化动力学的研究 | 第59页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第59-75页 |
| 2.3.1 HRP修饰AAO膜的表征 | 第59-61页 |
| 2.3.2 AAO纳米通道内酶催化生成聚合物的原理验证 | 第61-63页 |
| 2.3.3 纳米通道中HRP催化生成聚合物的SEM表征 | 第63-64页 |
| 2.3.4 HRP修饰AAO膜的优化 | 第64-67页 |
| 2.3.5 纳米通道中HRP分子数量的计算 | 第67-69页 |
| 2.3.6 纳米通道中HRP催化聚合物的离子电流监测 | 第69-71页 |
| 2.3.7 纳米通道内酶催化动力学研究和比较 | 第71-75页 |
| 2.4 小结 | 第75-76页 |
| 第三章 基于纳米通道内双酶催化聚合物生长的葡萄糖检测研究 | 第76-93页 |
| 3.1 引言 | 第76-78页 |
| 3.2 试验部分 | 第78-79页 |
| 3.2.1 材料和设备 | 第78页 |
| 3.2.2 AAO膜的修饰 | 第78页 |
| 3.2.3 检测池组装 | 第78页 |
| 3.2.4 纳米通道中离子电流的测量 | 第78-79页 |
| 3.2.5 GOx/HRP催化葡萄糖氧化聚合o-PD的吸光度测量 | 第79页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第79-91页 |
| 3.3.1 纳米通道的修饰及表征 | 第79-81页 |
| 3.3.2 反应条件优化 | 第81-83页 |
| 3.3.3 纳米通道孔径的优化 | 第83-85页 |
| 3.3.4 H_2O_2和葡萄糖的检测 | 第85-91页 |
| 3.4 小结 | 第91-93页 |
| 第四章 基于酶-催化-诱导制备无机纳米粒子的比色法检测葡萄糖 | 第93-119页 |
| 4.1 引言 | 第93-94页 |
| 4.2 实验部分 | 第94-97页 |
| 4.2.1 材料和仪器 | 第94-95页 |
| 4.2.2 样品和预处理 | 第95页 |
| 4.2.3 葡萄糖HPLC分析 | 第95页 |
| 4.2.4 比色生物传感器检测葡萄糖的过程 | 第95-96页 |
| 4.2.5 优化反应参数 | 第96-97页 |
| 4.2.6 酶动力学分析 | 第97页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第97-118页 |
| 4.3.1 酶催化合成PBNPs的原理 | 第97-104页 |
| 4.3.2 反应条件优化 | 第104-111页 |
| 4.3.2.1 pH的优化 | 第104-107页 |
| 4.3.2.2 GOx浓度的优化 | 第107-108页 |
| 4.3.2.3 Fe~(3+)与Fe(CN)6~(3-)摩尔比的优化 | 第108-109页 |
| 4.3.2.4 FeCl_3浓度的优化 | 第109-110页 |
| 4.3.2.5 反应时间的优化 | 第110-111页 |
| 4.3.3 酶催化动力学分析 | 第111-112页 |
| 4.3.4 评估比色生物传感器的检测性能 | 第112-115页 |
| 4.3.4.1 比色生物传感器用于H_2O_2的检测 | 第112-113页 |
| 4.3.4.2 比色生物传感器用于葡萄糖的检测 | 第113-115页 |
| 4.3.5 葡萄酒样品中葡萄糖浓度的检测 | 第115-118页 |
| 4.4 小结 | 第118-119页 |
| 第五章 基于纳米通道内酶-催化-诱导制备无机纳米粒子的葡萄糖检测研究 | 第119-127页 |
| 5.1 引言 | 第119-120页 |
| 5.2 试验部分 | 第120-121页 |
| 5.2.1 材料和设备 | 第120页 |
| 5.2.2 纳米通道上固定GOx | 第120页 |
| 5.2.3 离子电流测量 | 第120-121页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第121-126页 |
| 5.3.1 GOx修饰AAO的表征 | 第121页 |
| 5.3.2 纳米通道内GOx催化葡萄糖诱导生成PBNPs原理的验证 | 第121-124页 |
| 5.3.3 对葡萄糖的检测 | 第124-126页 |
| 5.4 小结 | 第126-127页 |
| 第六章 结论与展望 | 第127-130页 |
| 6.1 研究结论 | 第127-128页 |
| 6.2 研究展望 | 第128-130页 |
| 参考文献 | 第130-157页 |
| 作者简历 | 第157-159页 |
