| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第17-53页 |
| 1.1 水凝胶的定义、分类和优点 | 第17-19页 |
| 1.1.1 水凝胶的定义 | 第17页 |
| 1.1.2 水凝胶的分类 | 第17-18页 |
| 1.1.3 DNA水凝胶的定义和优点 | 第18-19页 |
| 1.2 DNA水凝胶合成方法 | 第19-27页 |
| 1.2.1 杂化DNA水凝胶合成方法 | 第19-22页 |
| 1.2.2 纯DNA水凝胶合成方法 | 第22-25页 |
| 1.2.3 基于核酸扩增形成的DNA水凝胶 | 第25-27页 |
| 1.3 DNA水凝胶的应用 | 第27-39页 |
| 1.3.1 生物传感 | 第27-32页 |
| 1.3.2 金属纳米离子的合成 | 第32-33页 |
| 1.3.3 药物释控和疾病治疗 | 第33-36页 |
| 1.3.4 细胞相关应用 | 第36-39页 |
| 1.4 本论文的主要研究内容 | 第39页 |
| 参考文献 | 第39-53页 |
| 第二章 纳米模拟酶@DNA水凝胶的制备及其在生化分析中的应用 | 第53-75页 |
| 2.1 引言 | 第53-54页 |
| 2.2 实验部分 | 第54-58页 |
| 2.2.1 实验试剂和仪器 | 第54-55页 |
| 2.2.2 金纳米颗粒的制备和表征 | 第55-56页 |
| 2.2.3 金纳米颗粒@DNA水凝胶的制备 | 第56页 |
| 2.2.4 金纳米颗粒@DNA水凝胶的催化 | 第56-57页 |
| 2.2.5 DNA水凝胶催化动力学 | 第57页 |
| 2.2.6 激光共聚焦显微镜成像 | 第57-58页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第58-68页 |
| 2.3.1 金纳米颗粒的催化性能 | 第58-60页 |
| 2.3.2 金纳米颗粒@DNA水凝胶的制备和表征 | 第60-61页 |
| 2.3.3 金纳米颗粒@DNA水凝胶的稳定性和催化效率 | 第61-63页 |
| 2.3.4 金纳米颗粒@DNA水凝胶的催化动力学研究 | 第63-64页 |
| 2.3.5 金纳米颗粒@DNA水凝胶的催化性能研究 | 第64-65页 |
| 2.3.6 DNA水凝胶能维持金纳米颗粒催化活性的机理 | 第65-67页 |
| 2.3.7 DNA水凝胶用于级联催化 | 第67-68页 |
| 2.4 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-75页 |
| 第三章 自塑形的固定于界面的DNA水凝胶的制备及其在生物传感中的应用 | 第75-97页 |
| 3.1 引言 | 第75-76页 |
| 3.2 实验部分 | 第76-80页 |
| 3.2.1 实验试剂和仪器 | 第76-77页 |
| 3.2.2 界面化DNA水凝胶的制备 | 第77-78页 |
| 3.2.3 琼脂糖凝胶电泳分析DNA扩增产物 | 第78页 |
| 3.2.4 制备界面化酶@DNA水凝胶 | 第78-79页 |
| 3.2.5 界面化辣根过氧化物酶@DNA水凝胶用于检测过氧化氢 | 第79页 |
| 3.2.6 界面化胆红素氧化酶@DNA水凝胶检测胆红素 | 第79页 |
| 3.2.7 荧光显微镜成像 | 第79-80页 |
| 3.2.8 原子力显微镜测试 | 第80页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第80-92页 |
| 3.3.1 界面化酶@DNA水凝胶的合成原理 | 第80-81页 |
| 3.3.2 界面化酶@DNA水凝胶的表征 | 第81-85页 |
| 3.3.3 界面化酶@DNA水凝胶的性质 | 第85-86页 |
| 3.3.4 界面化酶@DNA水凝胶的负载量和稳定性 | 第86-88页 |
| 3.3.5 界面化酶@DNA水凝胶用于生物分析 | 第88-89页 |
| 3.3.6 界面化酶@DNA水凝胶的普适性 | 第89-91页 |
| 3.3.7 界面化酶@DNA水凝胶的抗干扰性和循环使用性能 | 第91-92页 |
| 3.4 结论 | 第92-93页 |
| 参考文献 | 第93-97页 |
| 第四章 脱氧核酶功能化的DNA水凝胶用于循环肿瘤DNA的宏观可视化检测 | 第97-113页 |
| 4.1 引言 | 第97-98页 |
| 4.2 实验部分 | 第98-101页 |
| 4.2.1 实验试剂和仪器 | 第98-100页 |
| 4.2.2 ctDNA的检测 | 第100页 |
| 4.2.3 琼脂糖凝胶电泳分析 | 第100页 |
| 4.2.4 血液样品的采集 | 第100-101页 |
| 4.2.5 血液样品的模拟分析 | 第101页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第101-109页 |
| 4.3.1 设计原理 | 第101-103页 |
| 4.3.2 实验原理验证 | 第103-105页 |
| 4.3.3 实验条件的优化 | 第105-106页 |
| 4.3.4 检测性能研究 | 第106-107页 |
| 4.3.5 稳定性和特异性 | 第107-108页 |
| 4.3.6 实际样品血浆的模拟检测 | 第108-109页 |
| 4.4 结论 | 第109页 |
| 参考文献 | 第109-113页 |
| 第五章 酶和电子传递双功能化的DNA水凝胶的构建及其在电化学分析中的应用 | 第113-129页 |
| 5.1 引言 | 第113-114页 |
| 5.2 实验部分 | 第114-117页 |
| 5.2.1 实验试剂和仪器 | 第114-115页 |
| 5.2.2 双功能DNA水凝胶的制备 | 第115-116页 |
| 5.2.3 双功能DNA水凝胶用于过氧化氢的电化学分析 | 第116页 |
| 5.2.4 双功能DNA水凝胶的抗干扰性 | 第116-117页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第117-124页 |
| 5.3.1 双功能DNA水凝胶的合成原理 | 第117-118页 |
| 5.3.2 双功能DNA水凝胶的表征 | 第118-119页 |
| 5.3.3 双功能DNA水凝胶的功能验证 | 第119-120页 |
| 5.3.4 双功能DNA水凝胶的实验条件优化 | 第120-121页 |
| 5.3.5 双功能DNA水凝胶用于过氧化氢的电化学分析 | 第121-122页 |
| 5.3.6 抗干扰性 | 第122-124页 |
| 5.4 结论 | 第124-125页 |
| 参考文献 | 第125-129页 |
| 第六章 基于DNA构象变化的DNA水凝胶用于便携式和可视化的钾离子检测 | 第129-145页 |
| 6.1 引言 | 第129-130页 |
| 6.2 实验部分 | 第130-132页 |
| 6.2.1 实验试剂和仪器 | 第130-131页 |
| 6.2.2 DNA水凝胶微孔板的制备 | 第131页 |
| 6.2.3 DNA水凝胶微孔板用于K~+的检测 | 第131-132页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第132-140页 |
| 6.3.1 实验原理 | 第132-133页 |
| 6.3.2 实验可行性分析 | 第133-134页 |
| 6.3.3 实验条件的优化 | 第134-136页 |
| 6.3.4 DNA水凝胶微孔板的检测性能研究 | 第136-139页 |
| 6.3.5 DNA水凝胶微孔板的普适性研究 | 第139-140页 |
| 6.3.6 DNA水凝胶用于高通量筛选 | 第140页 |
| 6.4 结论 | 第140-141页 |
| 参考文献 | 第141-145页 |
| 第七章 结论与展望 | 第145-148页 |
| 7.1 结论 | 第145-147页 |
| 7.2 展望 | 第147-148页 |
| 作者在攻博士学位期间公开发表的论文 | 第148-150页 |
| 致谢 | 第150页 |
