| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语说明 | 第16-18页 |
| 第一章 前言 | 第18-33页 |
| 1 神经炎症 | 第18-28页 |
| 1.1 神经炎症的定义 | 第18页 |
| 1.2 神经炎症的致病机理 | 第18-22页 |
| 1.3 神经炎症与神经退行性疾病(Neurodegenerative diseases,NDDs) | 第22-28页 |
| 2 姜黄与神经退行性疾病 | 第28-31页 |
| 2.1 姜黄素与AD | 第28-29页 |
| 2.2 姜黄素与PD | 第29-30页 |
| 2.3 姜黄与其他神经退行性疾病 | 第30-31页 |
| 3 姜黄油(Turmeric essential oil,TEO) | 第31-32页 |
| 4 立题依据 | 第32-33页 |
| 第二章 姜黄素与胡椒碱联合给药对LPS诱导的神经炎症的保护作用及机理研究 | 第33-57页 |
| 1 前言 | 第33-37页 |
| 1.1 LPS | 第33页 |
| 1.2 LPS诱导的神经炎症动物模型 | 第33-35页 |
| 1.3 胡椒碱 | 第35-37页 |
| 2 材料与方法 | 第37-46页 |
| 2.1 实验动物 | 第37-38页 |
| 2.2 主要材料 | 第38页 |
| 2.3 主要仪器 | 第38-39页 |
| 2.4 试剂配制 | 第39-40页 |
| 2.5 动物分组和给药 | 第40-41页 |
| 2.6 动物体重记录 | 第41页 |
| 2.7 动物取材和样本处理 | 第41页 |
| 2.8 石蜡切片制作 | 第41-43页 |
| 2.9 尼氏染色 | 第43-44页 |
| 2.10 免疫组化 | 第44-45页 |
| 2.11 脑组织匀浆液ELISA检测 | 第45页 |
| 2.12 LPS建立小胶质细胞神经炎症模型及检测指标和方法(详见第四章) | 第45-46页 |
| 2.13 统计学处理 | 第46页 |
| 3 实验结果与分析 | 第46-55页 |
| 3.1 动物体重测定 | 第46页 |
| 3.2 姜黄素联合胡椒碱对LPS所致神经元损伤的保护作用 | 第46-49页 |
| 3.3 姜黄素联合胡椒碱对LPS诱导的炎症因子释放水平的抑制作用 | 第49-51页 |
| 3.4 姜黄素对LPS诱导的BV2细胞存活率的影响 | 第51-52页 |
| 3.5 姜黄素对LPS诱导的炎症因子的影响 | 第52-53页 |
| 3.6 姜黄素对TLR4介导的下游信号通路的影响 | 第53-54页 |
| 3.7 姜黄素对TLR4沉默的BV2细胞,感染LPS后炎症因子表达水平的影响 | 第54-55页 |
| 4 小结与讨论 | 第55-57页 |
| 第三章 芳姜黄酮对LPS诱导的神经炎症模型小鼠的保护作用 | 第57-80页 |
| 1 前言 | 第57-59页 |
| 1.1 芳姜黄酮的化学结构 | 第57页 |
| 1.2 芳姜黄酮生物活性 | 第57-59页 |
| 2 材料与方法 | 第59-69页 |
| 2.1 实验动物 | 第59页 |
| 2.2 主要材料 | 第59页 |
| 2.3 主要仪器 | 第59-60页 |
| 2.4 芳姜黄酮的分离与鉴定 | 第60页 |
| 2.5 动物分组和给药 | 第60-61页 |
| 2.6 动物体重记录 | 第61页 |
| 2.7 Micro-PET/CT | 第61-62页 |
| 2.8 Morris水迷宫 | 第62-63页 |
| 2.9 动物取材和样本处理 | 第63-64页 |
| 2.10 石蜡切片制作 | 第64-65页 |
| 2.11 尼氏染色 | 第65-66页 |
| 2.12 免疫组化 | 第66-67页 |
| 2.13 免疫荧光 | 第67-68页 |
| 2.14 脑组织匀浆液ELISA检测 | 第68-69页 |
| 2.15 统计学处理 | 第69页 |
| 3 实验结果及分析 | 第69-78页 |
| 3.1 动物体重测定 | 第69-70页 |
| 3.2 芳姜黄酮对LPS所致的记忆和认知损伤的改善作用 | 第70-73页 |
| 3.3 芳姜黄酮对LPS所致中枢代谢异常的缓解作用 | 第73-74页 |
| 3.4 芳姜黄酮对LPS所致神经元损伤的保护作用 | 第74-75页 |
| 3.5 芳姜黄酮对LPS诱导的小胶质细胞活化程度的抑制作用 | 第75-76页 |
| 3.6 芳姜黄酮对LPS诱导的炎症因子释放水平的抑制作用 | 第76-78页 |
| 4 小结与讨论 | 第78-80页 |
| 第四章 芳姜黄酮缓解神经炎症的机制研究 | 第80-99页 |
| 1 前言 | 第80-84页 |
| 1.1 TLR4介导的炎症信号通路 | 第80-81页 |
| 1.2 TLR4拮抗剂 | 第81-84页 |
| 2 材料与方法 | 第84-93页 |
| 2.1 主要材料 | 第84-85页 |
| 2.2 主要仪器 | 第85页 |
| 2.3 试剂配制 | 第85-86页 |
| 2.4 细胞培养 | 第86-88页 |
| 2.5 MTT法测定细胞增殖抑制率 | 第88页 |
| 2.6 细胞分组和给药 | 第88-89页 |
| 2.7 样品制备 | 第89页 |
| 2.8 siRNA(small interfering RNA,siRNA)转染实验 | 第89-91页 |
| 2.9 Western blotting | 第91-92页 |
| 2.10 细胞上清液ELISA分析 | 第92-93页 |
| 2.11 统计学处理 | 第93页 |
| 3 实验结果与分析 | 第93-97页 |
| 3.1 芳姜黄酮对LPS诱导的BV2细胞存活率的影响 | 第93-94页 |
| 3.2 芳姜黄酮对LPS诱导的炎症因子的影响 | 第94-95页 |
| 3.3 芳姜黄酮对TLR4介导的下游信号通路的影响 | 第95-96页 |
| 3.4 芳姜黄酮对TLR4沉默的BV2细胞,感染LPS后炎症因子表达水平的影响 | 第96-97页 |
| 4 小结与讨论 | 第97-99页 |
| 第五章 总结与展望 | 第99-101页 |
| 参考文献 | 第101-108页 |
| 在学期间发表论文清单 | 第108-110页 |
| 致谢 | 第110页 |
