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Tudor-SN通过调控染色质重塑促进DNA损伤修复的分子机制

中文摘要第4-7页
Abstract第7-8页
缩略语第11-14页
前言第14-22页
    研究现状、成果第15-21页
    研究目的、方法第21-22页
对象和方法第22-58页
    1.1 细胞、菌种和质粒第22-23页
    1.2 主要实验试剂第23-26页
        1.2.1 细胞培养及转染所需试剂第23页
        1.2.2 实验所需抗体第23-25页
        1.2.3 细菌培养及质粒提取第25页
        1.2.4 实验常用试剂及所需试剂盒第25-26页
    1.3 实验常用溶液、缓冲液第26-39页
        1.3.1 常用缓冲液第26-31页
        1.3.2 免疫荧光实验相关溶液第31-32页
        1.3.3 细胞样本制备所需裂解液,缓冲液第32-33页
        1.3.4 细菌培养所需培养基第33-34页
        1.3.5 单细胞电泳实验所需缓冲液第34-36页
        1.3.6 ChIP实验所需缓冲液第36-39页
    1.4 实验所需仪器及设备第39-40页
        1.4.1 主要仪器设备第39-40页
        1.4.2 其他实验仪器设备第40页
    1.5 实验方法与步骤第40-58页
        1.5.1 细胞实验及样品制备第40-48页
        1.5.2 蛋白结合检测实验第48-52页
        1.5.3 细胞活性检测实验第52-54页
        1.5.4 损伤修复检测实验第54-58页
结果第58-81页
    2.1 Tudor-SN蛋白与损伤修复蛋白相互结合第58-59页
    2.2 Tudor-SN在IR后细胞存活中发挥重要作用第59-63页
    2.3 Tudor-SN与PARP1结合发生PAR修饰后被募集到核内损伤部位第63-69页
    2.4 Tudor-SN促进DNA损伤后染色质的松弛第69-73页
    2.5 Tudor-SN缺失致染色质松弛受限影响ATM信号通路的激活第73-76页
    2.6 Tudor-SN缺失导致细胞对损伤DNA修复功能发生障碍第76-81页
讨论第81-86页
    3.1 Tudor-SN作为新的损伤修复蛋白参与DDR进程第81页
    3.2 PARP1激活Tudor-SN并将其募集到损伤部位促进染色质松弛第81-82页
    3.3 Tudor-SN缺失致染色质结构改变影响ATM及其下游通路的激活第82-84页
    3.4 Tudor-SN与DNA损伤修复及肿瘤放射治疗第84-86页
全文结论第86-88页
论文创新点第88-89页
参考文献第89-101页
发表论文和参加科研情况说明第101-102页
综述 染色质重塑与DNA损伤修复第102-117页
    综述参考文献第109-117页
致谢第117-119页
个人简历第119页

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