摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第1章 绪论 | 第10-20页 |
1.1 课题研究的主要背景 | 第10-15页 |
1.1.1 深海环境及其微生物多样性分析 | 第10-13页 |
1.1.2 黄曲霉毒素 | 第13-15页 |
1.2 课题的国内外研究现状及分析 | 第15-19页 |
1.2.1 海洋细菌、真菌抑菌活性研究现状分析 | 第15-16页 |
1.2.2 海洋放线菌抑菌活性研究现状分析 | 第16-17页 |
1.2.3 海洋微生物抑制丝状真菌研究现状 | 第17-18页 |
1.2.4 海洋微生物抑菌活性物质结构研究现状 | 第18-19页 |
1.3 课题的来源、目的以及内容 | 第19-20页 |
1.3.1 课题的来源 | 第19页 |
1.3.2 课题的目的 | 第19页 |
1.3.3 课题的内容 | 第19-20页 |
第2章 抑制黄曲霉毒素的深海高活性菌株的筛选 | 第20-30页 |
2.1 材料 | 第20-22页 |
2.1.1 实验菌株、指示菌株及其孢子悬液制备 | 第20页 |
2.1.2 主要试剂 | 第20-21页 |
2.1.3 主要仪器设备 | 第21页 |
2.1.4 本实验所用的培养基 | 第21-22页 |
2.2 Tip-culture实验方法 | 第22-24页 |
2.2.1 实验技术路线 | 第22-23页 |
2.2.2 深海菌株的活化 | 第23页 |
2.2.3 液体接种 | 第23页 |
2.2.4 摇瓶发酵 | 第23页 |
2.2.5 Tip culture法检测发酵液抑菌抑毒活性 | 第23-24页 |
2.3 结果与讨论 | 第24-29页 |
2.3.1 不同菌株的液体发酵特性 | 第24-27页 |
2.3.2 不同菌株的发酵液对黄曲霉毒素的抑制活性 | 第27-29页 |
2.3.3 讨论 | 第29页 |
2.4 本章小结 | 第29-30页 |
第3章 抑制黄曲霉毒素的深海活性物质的发酵优化 | 第30-41页 |
3.1 实验材料与方法 | 第30-31页 |
3.1.1 实验主要仪器 | 第30页 |
3.1.2 供试菌株 | 第30-31页 |
3.1.3 高活性菌株适宜的发酵培养基筛选 | 第31页 |
3.1.4 FA13 菌株的均匀设计发酵优化与实验验证 | 第31页 |
3.2 结果与讨论 | 第31-39页 |
3.2.1 不同培养基对菌株的抑菌抑毒效果的影响 | 第31-33页 |
3.2.2 高活性菌株FA13 的发酵优化 | 第33-39页 |
3.2.3 讨论 | 第39页 |
3.3 本章小结 | 第39-41页 |
第4章 抑制黄曲霉毒素的深海活性物质的特性研究 | 第41-50页 |
4.1 实验材料与方法 | 第41-42页 |
4.1.1 实验主要仪器 | 第41-42页 |
4.1.2 主要供试菌株 | 第42页 |
4.2 活性物质特性研究 | 第42-43页 |
4.2.1 活性物质温度稳定性研究 | 第42页 |
4.2.2 活性物质酸碱稳定性研究 | 第42页 |
4.2.3 活性物质酶解稳定性研究 | 第42页 |
4.2.4 活性物质保藏时间稳定性研究 | 第42页 |
4.2.5 活性物质的有机溶剂可提取性研究 | 第42-43页 |
4.3 结果与讨论 | 第43-49页 |
4.3.1 温度对活性物质的影响 | 第43-44页 |
4.3.2 酸碱度对活性物质的影响 | 第44页 |
4.3.3 酶解对活性物质的影响 | 第44-46页 |
4.3.4 保藏时间对活性物质的影响 | 第46页 |
4.3.5 有机溶剂萃取对活性物质的影响 | 第46-48页 |
4.3.6 讨论 | 第48-49页 |
4.4 本章小结 | 第49-50页 |
结论 | 第50-52页 |
参考文献 | 第52-57页 |
攻读硕士学位期间发表的论文及其他成果 | 第57-59页 |
致谢 | 第59页 |