| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 缩略词表 | 第14-15页 |
| 第1章 引言 | 第15-21页 |
| 1 Repetin(RPTN)概述 | 第15-18页 |
| 1.1 RPTN基因 | 第15页 |
| 1.2 人RPTN蛋白氨基酸序列和特征 | 第15页 |
| 1.3 RPTN蛋白表达的研究 | 第15-16页 |
| 1.4 RPTN是S100蛋白家族新成员 | 第16-17页 |
| 1.5 RPTN在神经系统中的作用 | 第17-18页 |
| 2 精神分裂症和双向情感障碍 | 第18-19页 |
| 2.1 精神分裂症和双向情感障碍研究进展 | 第18页 |
| 2.2 非典型的抗精神疾病药奥氮平在神经系统中的作用 | 第18-19页 |
| 3 研究目的和意义 | 第19-21页 |
| 第2章 精神类疾病患者血清RPTN水平 | 第21-27页 |
| 1 材料和试剂 | 第21-22页 |
| 1.1 主要材料 | 第21页 |
| 1.2 主要试剂 | 第21页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第21-22页 |
| 1.4 主要仪器 | 第22页 |
| 2. 实验方法 | 第22-23页 |
| 2.1 实验流程 | 第22-23页 |
| 2.2 实验数据处理 | 第23页 |
| 3 实验结果与分析 | 第23-24页 |
| 3.1 精神分裂症和双向情感障碍患者血清RPTN的比较 | 第23页 |
| 3.2 不同年龄和不同性别正常人血清RPTN的比较 | 第23-24页 |
| 3.3 吸毒者与其年龄相近正常人血清RPTN的比较 | 第24页 |
| 4 结论 | 第24-25页 |
| 5. 讨论 | 第25-27页 |
| 第3章 正常人、精神分裂症患者血小板RPTN水平 | 第27-31页 |
| 1 材料和试剂 | 第27-28页 |
| 1.1 主要材料 | 第27页 |
| 1.2 主要试剂 | 第27页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第27-28页 |
| 1.4 主要仪器 | 第28页 |
| 2 实验方法 | 第28-29页 |
| 2.1 血小板的分离 | 第28页 |
| 2.2 实验流程 | 第28页 |
| 2.3 实验数据处理 | 第28-29页 |
| 3 实验结果及分析 | 第29页 |
| 4 结论 | 第29页 |
| 5 讨论 | 第29-31页 |
| 第4章 非典型抗精神分裂症药对小鼠血清RPTN的影响 | 第31-35页 |
| 1 材料和试剂 | 第31页 |
| 1.1 主要材料 | 第31页 |
| 1.2 主要试剂 | 第31页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第31页 |
| 1.4 主要仪器 | 第31页 |
| 2 实验方法 | 第31-32页 |
| 2.1 小鼠腹腔注射抗精神病药物 | 第31-32页 |
| 2.2 小鼠CUMS模型 | 第32页 |
| 2.3 实验流程 | 第32页 |
| 2.4 实验数据处理 | 第32页 |
| 3 实验结果及分析 | 第32-33页 |
| 3.1 抗精神病药物对小鼠血清RPTN的影响 | 第33页 |
| 3.2 CUMS小鼠和正常小鼠血清RPTN的比较 | 第33页 |
| 4 结论 | 第33页 |
| 5 讨论 | 第33-35页 |
| 第5章 奥氮平、DOI和Ca~(2+)对TN启动子转录活性的影响 | 第35-43页 |
| 1 材料和试剂 | 第35-36页 |
| 1.1 主要材料 | 第35页 |
| 1.2 主要试剂 | 第35页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第35-36页 |
| 2 主要仪器 | 第36页 |
| 3 实验流程 | 第36-40页 |
| 3.1 pGL2-RPTN promoter报告基因载体的构建 | 第36-38页 |
| 3.2 荧光素酶报告基因活性的检测 | 第38-40页 |
| 3.2.1 细胞的培养与准备 | 第38-39页 |
| 3.2.2 细胞瞬时转染pGL2-RPTN promoter表达载体 | 第39页 |
| 3.2.3 荧光素酶报告基因测定 | 第39-40页 |
| 4 实验结果及分析 | 第40页 |
| 5 结论 | 第40-41页 |
| 6 讨论 | 第41-43页 |
| 第6章 RPTN在神经系统作用的研究 | 第43-51页 |
| 1 材料和试剂 | 第43-44页 |
| 1.1 主要材料 | 第43页 |
| 1.2 主要试剂 | 第43页 |
| 1.3 主要仪器 | 第43页 |
| 1.4 主要试剂配制 | 第43-44页 |
| 2 实验方法 | 第44-46页 |
| 2.1 小鼠脑神经干细胞RPTN的表达 | 第44-45页 |
| 2.1.1 小鼠脑神经干细胞的分离及培养 | 第44页 |
| 2.1.2 小鼠脑神经干细胞爬片的制备 | 第44-45页 |
| 2.1.3 免疫组织化学法检测RPTN在小鼠脑神经干细胞的表达 | 第45页 |
| 2.2 细胞自噬 | 第45-46页 |
| 2.2.1 细胞爬片及处理 | 第45-46页 |
| 2.2.2 细胞自噬的检测 | 第46页 |
| 2.3 RPTN的生物信息学分析 | 第46页 |
| 3 实验结果及分析 | 第46-49页 |
| 3.1 RPTN与神经精神疾病基因之间的联系 | 第46-47页 |
| 3.2 RPTN在小鼠脑神经干细胞的表达 | 第47页 |
| 3.3 RPTN对细胞自噬的影响 | 第47-49页 |
| 4 结论 | 第49页 |
| 5 讨论 | 第49-51页 |
| 第7章 讨论 | 第51-55页 |
| 第8章 总结与展望 | 第55-59页 |
| 参考文献 | 第59-69页 |
| 致谢 | 第69-71页 |
| 攻读硕士期间研究成果 | 第71页 |
