| 本课题受以下基金资助 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-10页 |
| ABSTRACT | 第10-15页 |
| 目录 | 第16-19页 |
| 縮略词简表 | 第19-21页 |
| 1 Dynamin-1在幼鼠MTLE模型及人MTLE中的表达变化 | 第21-41页 |
| 1.1 前言 | 第21-22页 |
| 1.2 材料与方法 | 第22-33页 |
| 1.2.1 主要试剂 | 第22-24页 |
| 1.2.2 主要仪器 | 第24页 |
| 1.2.3 主要溶液的配制 | 第24-28页 |
| 1.2.4 实验动物 | 第28页 |
| 1.2.5 内侧颞叶癫痫患儿及对照组海马组织 | 第28-29页 |
| 1.2.6 实验方法 | 第29-33页 |
| 1.3 结果 | 第33-38页 |
| 1.3.1 模型制备及行为学观察 | 第33页 |
| 1.3.2 脑电图描记 | 第33-34页 |
| 1.3.3 头颅MRI扫描 | 第34页 |
| 1.3.4 Western blot检测dynamin-1蛋白的表达水平 | 第34-36页 |
| 1.3.5 免疫组化检测磷酸化dynamin-1蛋白在各时期MTLE大鼠海马组织中的表达 | 第36-37页 |
| 1.3.6 免疫组化检测磷酸化dynamin-1蛋白在MTLE患儿和对照组海马组织中的表达 | 第37-38页 |
| 1.4 讨论 | 第38-40页 |
| 1.5 结论 | 第40-41页 |
| 2 Dynamin-1在癫痫细胞模型中的表达变化及对胞吞量的影响 | 第41-59页 |
| 2.1 前言 | 第41-43页 |
| 2.2 材料与方法 | 第43-52页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第43-44页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第44-45页 |
| 2.2.3 实验动物 | 第45页 |
| 2.2.4 主要溶液的配制 | 第45-49页 |
| 2.2.5 实验方法 | 第49-52页 |
| 2.3 实验结果 | 第52-56页 |
| 2.3.1 免疫荧光鉴定神经元 | 第52-53页 |
| 2.3.2 海马神经元癫痫细胞模型建立 | 第53-54页 |
| 2.3.3 Western blot检测dynamin-1蛋白在海马神经元癫痫细胞模型中的表达 | 第54页 |
| 2.3.4 免疫荧光检测磷酸化dynamin-1蛋白在海马神经元癫痫细胞模型中的表达 | 第54-55页 |
| 2.3.5 转铁蛋白检测癫痫细胞模型中突触囊泡胞吞量的变化 | 第55-56页 |
| 2.4 讨论 | 第56-58页 |
| 2.5 结论 | 第58-59页 |
| 3 Dynamin-1四个结构域相互作用蛋白的筛选及鉴定 | 第59-77页 |
| 3.1 前言 | 第59-60页 |
| 3.2 材料与方法 | 第60-64页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第60-61页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第61-62页 |
| 3.2.3 实验动物 | 第62页 |
| 3.2.4 主要溶液的配制 | 第62-63页 |
| 3.2.5 实验方法 | 第63-64页 |
| 3.3 结果 | 第64-70页 |
| 3.3.1 质谱鉴定 | 第64-67页 |
| 3.3.2 已知相互作用蛋白endophilins及amphiphysins鉴定 | 第67-68页 |
| 3.3.3 免疫共沉淀鉴定ClC-3、Rab-GDI及TUC-4b与dynamin-1的相互作用 | 第68-69页 |
| 3.3.4 Dynamin-1及其PRD域相互作用蛋白的功能富集分析 | 第69页 |
| 3.3.5 Dynamin-1 PRD域的相互作用蛋白网络 | 第69-70页 |
| 3.4 讨论 | 第70-76页 |
| 3.5 结论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-91页 |
| 综述 | 第91-120页 |
| 参考文献 | 第104-120页 |
| 致谢 | 第120-121页 |
| 攻读学位期间主要的研究成果 | 第121页 |
