| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 第1章 引言 | 第11-18页 |
| 1.1 组织工程 | 第11-12页 |
| 1.1.1 组织工程的应用 | 第11页 |
| 1.1.2 肌腱组织工程存在的问题 | 第11-12页 |
| 1.2 生物材料在组织工程中的应用进展研究 | 第12-13页 |
| 1.2.1 合成可降解生物材料 | 第12页 |
| 1.2.2 天然可降解生物材料 | 第12-13页 |
| 1.3 胶原蛋白材料 | 第13-15页 |
| 1.3.1 脱细胞处理方法 | 第13-14页 |
| 1.3.2 力学性质研究 | 第14-15页 |
| 1.4 BMSCs的研究 | 第15-16页 |
| 1.4.1 BMSCs | 第15页 |
| 1.4.2 BMSCs在组织工程中的应用 | 第15-16页 |
| 1.4.3 BMSCs的分化调控 | 第16页 |
| 1.5 本文的贡献 | 第16-17页 |
| 1.6 论文的组织 | 第17-18页 |
| 第2章 骨髓间充质干细胞(BMSCs)的分离和体外培养 | 第18-25页 |
| 2.1 实验试剂与仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.1 材料和试剂 | 第18页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.3 相关试剂的配制 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.2.1 大鼠BMSCs的分离和培养 | 第19-20页 |
| 2.2.2 细胞冻存 | 第20页 |
| 2.2.3 细胞复苏 | 第20页 |
| 2.2.4 流式细胞术检测 | 第20页 |
| 2.2.5 BMSCs的多分化潜能及鉴定 | 第20-21页 |
| 2.3 实验结果 | 第21-23页 |
| 2.3.1 BMSCs形态学观察 | 第21页 |
| 2.3.2 BMSCs表面标记物检测 | 第21-22页 |
| 2.3.3 BMSCs成骨和成软骨诱导 | 第22-23页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第23-25页 |
| 第3章 胶原纤维定向和随机排列支架材料的制备和表征 | 第25-33页 |
| 3.1 实验试剂与仪器 | 第25-26页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第25页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第25页 |
| 3.1.3 相关试剂的配制 | 第25-26页 |
| 3.2 实验方法 | 第26-28页 |
| 3.2.1 大鼠尾肌腱胶原蛋白的获取 | 第26页 |
| 3.2.2 肌腱组织脱细胞处理 | 第26页 |
| 3.2.3 DNA含量检测 | 第26-27页 |
| 3.2.4 脱细胞肌腱支架材料的制备 | 第27-28页 |
| 3.2.5 体式显微镜和扫描电子显微镜观察 | 第28页 |
| 3.2.6 统计学分析 | 第28页 |
| 3.3 实验结果 | 第28-31页 |
| 3.3.1 肌腱组织脱细胞评价 | 第28-30页 |
| 3.3.2 支架材料表面胶原排列方式观察 | 第30-31页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第31-33页 |
| 第4章 BMSCs的形态、增殖和分化 | 第33-54页 |
| 4.1 实验试剂与仪器 | 第33-35页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第33页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第33-34页 |
| 4.1.3 相关实验试剂的配制 | 第34-35页 |
| 4.2 实验方法 | 第35-40页 |
| 4.2.1 BMSCs的接种和培养 | 第35页 |
| 4.2.2 细胞增殖检测 | 第35页 |
| 4.2.3 激光共聚焦扫描显微镜观察细胞在材料上的形态 | 第35页 |
| 4.2.4 基因表达检测 | 第35-40页 |
| 4.3 实验结果 | 第40-52页 |
| 4.3.1 BMSCs在不同血清条件下的形态和增殖研究 | 第40-43页 |
| 4.3.2 BMSCs在定向和随机排列胶原支架上的分化 | 第43-52页 |
| 4.4 小结与讨论 | 第52-54页 |
| 第5章 总结与展望 | 第54-55页 |
| 5.1 本论文工作总结 | 第54页 |
| 5.2 下一步研究方向 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 附录 中英文名称对照与缩写 | 第61-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第65-66页 |
