| 缩略语 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-25页 |
| 1.1 枳壳的研究概况 | 第11-16页 |
| 1.1.1 枳壳的品种及道地考证 | 第11页 |
| 1.1.2 枳壳的化学研究进展 | 第11-13页 |
| 1.1.3 枳壳的药理作用 | 第13-16页 |
| 1.2 小胶质细胞的研究概况 | 第16-17页 |
| 1.3 脂多糖诱导的炎症信号转导通路的研究进展 | 第17-25页 |
| 第2章 枳壳黄酮类化学成分的提取、分离 | 第25-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.1 实验用植物 | 第25页 |
| 2.1.2 仪器与试剂 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-27页 |
| 2.2.1 枳壳黄酮化合物的分离、纯化流程 | 第25-27页 |
| 2.2.2 黄酮类化合物的检识 | 第27页 |
| 2.3 结果 | 第27页 |
| 2.4 讨论 | 第27-28页 |
| 第3章 枳壳黄酮类化合物对LPS诱导的小胶质细胞TNF-α表达的影响及构效关系分析 | 第28-41页 |
| 3.1 实验材料 | 第28-29页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第28页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第28页 |
| 3.1.3 实验样品 | 第28-29页 |
| 3.1.4 实验仪器 | 第29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-30页 |
| 3.2.1 原代小胶质细胞的培养 | 第29-30页 |
| 3.2.2 MTT法检测7种黄酮类化合物对原代小胶质细胞毒实验 | 第30页 |
| 3.2.3 LPS诱导原代小胶质细胞模型条件 | 第30页 |
| 3.2.4 黄酮类化合物对LPS诱导的原代小胶质细胞TNF-α分泌的影响 | 第30页 |
| 3.3 统计学处理 | 第30页 |
| 3.4 实验结果 | 第30-40页 |
| 3.4.1 原代小胶质细胞的形态变化 | 第30-31页 |
| 3.4.2 MTT法检测7种黄酮类化合物对原代小胶质细胞毒实验 | 第31-34页 |
| 3.4.3 LPS诱导原代小胶质细胞模型建立的最佳条件 | 第34页 |
| 3.4.4 黄酮类化合物对LPS诱导的原代小胶质细胞TNF-α释放的影响 | 第34-39页 |
| 3.4.5 构效关系分析 | 第39-40页 |
| 3.5 讨论 | 第40-41页 |
| 第4章 红橘素抗神经性炎症的作用机制研究 | 第41-56页 |
| 4.1 实验材料 | 第41页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第41页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-45页 |
| 4.2.1 小胶质细胞的培养 | 第41-42页 |
| 4.2.2 BV-2细胞系的培养 | 第42页 |
| 4.2.3 Griess法检测细胞中NO的含量 | 第42页 |
| 4.2.4 ELISA法检测细胞上清液中细胞因子的含量 | 第42-43页 |
| 4.2.5 RT-PCR检测 | 第43-44页 |
| 4.2.6 细胞核蛋白的提取 | 第44页 |
| 4.2.7 Western blot检测蛋白表达 | 第44-45页 |
| 4.3 统计学处理 | 第45-46页 |
| 4.4 实验结果 | 第46-53页 |
| 4.4.1 红橘素对BV-2细胞活力的影响 | 第46-47页 |
| 4.4.2 红橘素对LPS诱导的小胶质细胞中NO、PGE2释放和iNOS、COX-2表达的抑制作用 | 第47-49页 |
| 4.4.3 红橘素对LPS诱导的小胶质细胞分泌细胞因子抑制作用的研究 | 第49-50页 |
| 4.4.4 红橘素对LPS诱导的BV-2细胞中MAPKs磷酸化的影响 | 第50页 |
| 4.4.5 红橘素对LPS诱导的小胶质细胞中NF-κB通路的影响 | 第50-53页 |
| 4.5 讨论 | 第53-56页 |
| 第5章 总结 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-67页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学位论文 | 第67-69页 |
| 个人简历 | 第69页 |
