| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-16页 |
| 第2章 材料和方法 | 第16-25页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-18页 |
| 2.1.1 实验细胞及动物 | 第16页 |
| 2.1.2 主要试剂和药品 | 第16-17页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第17页 |
| 2.1.4 主要试剂和溶液的配制 | 第17-18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-25页 |
| 2.2.1 人正常 B 细胞和 DLBCL 细胞 CCL5mRNA 检测 | 第18-20页 |
| 2.2.2 不同糖浓度培养人 DLBCL 细胞株和鼠 DLBCL 细胞株 | 第20页 |
| 2.2.3 不同表达 CCL5 鼠 A20 细胞株建立 | 第20-21页 |
| 2.2.4 糖尿病鼠模型建立 | 第21页 |
| 2.2.5 淋巴瘤模型鼠建立 | 第21-23页 |
| 2.2.6 成瘤组织免疫组织化学染色 | 第23-24页 |
| 2.2.7 酶免疫吸附实验(ELISA)检测外周血 RANTES 的分泌 | 第24页 |
| 2.2.8 统计学分析 | 第24-25页 |
| 第3章 结果 | 第25-36页 |
| 3.1 人正常 B 细胞和 DLBCL 细胞系 CCL5mRNA 表达 | 第25-26页 |
| 3.2 不同糖浓度培养人 DLBCL 细胞株和鼠 DLBCL 细胞株 CCL5mRNA表达 | 第26-28页 |
| 3.3 糖尿病模型小鼠建模情况 | 第28-29页 |
| 3.4 动物成瘤情况 | 第29-33页 |
| 3.5 成瘤组织免疫组化检测 CCL5 表达 | 第33-34页 |
| 3.6 成瘤鼠外周血 CCL5 检测 | 第34-36页 |
| 第4章 讨论 | 第36-39页 |
| 第5章 结论 | 第39-40页 |
| 致谢 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-44页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第44-45页 |
| 综述 | 第45-51页 |
| 参考文献 | 第49-51页 |
