| 缩略词表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1.引言 | 第11-12页 |
| 2.材料 | 第12-17页 |
| 2.1 细胞系及动物模型 | 第12页 |
| 2.2 仪器与设备 | 第12-13页 |
| 2.3 主要试剂及耗材 | 第13-14页 |
| 2.4 试剂盒 | 第14-15页 |
| 2.5 抗体 | 第15页 |
| 2.6 试剂的配置及使用 | 第15-16页 |
| 2.7 数据处理及制图 | 第16-17页 |
| 3.实验方法 | 第17-35页 |
| 3.1 细胞实验 | 第17-27页 |
| 3.1.1 Neuro2a细胞培养 | 第17页 |
| 3.1.2 荧光素酶实验 | 第17-26页 |
| 3.1.3 转染 | 第26页 |
| 3.1.4 ICR小鼠脑皮层原代神经细胞的分离与培养 | 第26页 |
| 3.1.5 高钾实验 | 第26-27页 |
| 3.1.6 细胞免疫荧光 | 第27页 |
| 3.2 动物实验 | 第27-35页 |
| 3.2.1 小鼠去除眼球实验 | 第27-28页 |
| 3.2.2 组织免疫荧光 | 第28页 |
| 3.2.3 染色质免疫沉淀技术 | 第28-30页 |
| 3.2.4 实时荧光定量PCR | 第30-31页 |
| 3.2.5 表观遗传学分析 | 第31-33页 |
| 3.2.6 蛋白质免疫印迹 | 第33-35页 |
| 4.实验设计与数据分析 | 第35-36页 |
| 5 实验结果 | 第36-44页 |
| 5.1 ThMunc18KO小鼠脑皮层上层基因表达降低,下层基因的表达未受到影响 | 第36-38页 |
| 5.2 ThMunc18KO小鼠中,EGR1和c-FOS在整个新皮层中的表达量均有所降低 | 第38页 |
| 5.3 在视觉剥夺的青春期小鼠中,UL和LL基因表达都是正常的 | 第38-40页 |
| 5.4 在体外实验中,UL和LL基因表达量都受神经活性的影响 | 第40-41页 |
| 5.5 EGR1和c-FOS可以结合到新皮层特异性基因的启动子上 | 第41-43页 |
| 5.6 UL和LL神经元之间不同的染色状态 | 第43-44页 |
| 6 讨论 | 第44-46页 |
| 7 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
| 个人简历 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 综述 | 第52-59页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
