| 英文缩略词表(ABBREVIATION) | 第6-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第12-14页 |
| 2 实验材料 | 第14-17页 |
| 2.1 实验动物 | 第14页 |
| 2.2 细胞株 | 第14页 |
| 2.3 抗体 | 第14页 |
| 2.4 主要试剂和试剂盒 | 第14-15页 |
| 2.5 主要仪器与设备 | 第15-16页 |
| 2.6 主要试剂和溶液的配方 | 第16-17页 |
| 3 实验方法 | 第17-22页 |
| 3.1 C6胶质瘤细胞的复苏、培养及传代 | 第17-18页 |
| 3.2 细胞形态观察实验 | 第18页 |
| 3.3 裸鼠荷瘤模型的建立 | 第18-19页 |
| 3.4 SD大鼠原位C6胶质瘤模型的建立 | 第19页 |
| 3.5 大鼠原位肿瘤模型的磁共振观察 | 第19-20页 |
| 3.6 HE染色 | 第20页 |
| 3.7 免疫组化染色 | 第20-21页 |
| 3.8 磁共振扫描序列及各参数 | 第21-22页 |
| 3.9 DCE-MRI数据处理及图像分析 | 第22页 |
| 3.10 统计学分析 | 第22页 |
| 4 结果 | 第22-37页 |
| 4.1 苍耳亭对C6胶质瘤细胞的抑制増殖和促进调亡的作用 | 第22-23页 |
| 4.2 苍耳亭在荷瘤裸鼠模型上对C6胶质瘤细胞的抑制作用 | 第23-25页 |
| 4.2.1 裸鼠荷瘤模型的建立 | 第23-24页 |
| 4.2.2 苍耳亭在荷瘤裸鼠模型上对C6胶质瘤的抑制作用 | 第24-25页 |
| 4.3 MRI动态检测苍耳亭对大鼠原位胶质瘤的抑制作用 | 第25-30页 |
| 4.3.1 大鼠原位胶质瘤模型的建立 | 第25-26页 |
| 4.3.2 大鼠原位胶质瘤的常规MRI表现 | 第26-28页 |
| 4.3.3 大鼠原位胶质瘤的增强扫描MRI表现 | 第28-29页 |
| 4.3.4 苍耳亭能减慢大鼠体重的减轻 | 第29-30页 |
| 4.4 DCE-MRI检测胶质瘤的抗血管生成的作用 | 第30-33页 |
| 4.5 磁共振图像和病理结果的相关性研究 | 第33-34页 |
| 4.6 苍耳亭下调C6胶质瘤中VEGF的表达 | 第34-37页 |
| 4.6.1 苍耳亭下调裸鼠皮下移植瘤中VEGF的表达 | 第34-36页 |
| 4.6.2 苍耳亭下调大鼠原位胶质瘤组织中VEGF的表达 | 第36-37页 |
| 5 讨论 | 第37-40页 |
| 6 结论 | 第40-41页 |
| 7 本研究的创新点 | 第41页 |
| 8 参考文献 | 第41-46页 |
| 附录 | 第46-48页 |
| 致谢 | 第48-50页 |
| 综述 | 第50-57页 |
| 参考文献 | 第55-57页 |
