| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 研究背景 | 第11页 |
| 1.2 邻苯二甲酸酯的简介及环境问题 | 第11-15页 |
| 1.2.1 邻苯二甲酸酯简介 | 第11-12页 |
| 1.2.2 邻苯二甲酸酯的环境污染 | 第12-13页 |
| 1.2.2.1 对空气环境的污染 | 第12页 |
| 1.2.2.2 对土壤的污染 | 第12-13页 |
| 1.2.2.3 对水体的污染 | 第13页 |
| 1.2.3 邻苯二甲酸酯的降解途径 | 第13-14页 |
| 1.2.3.1 自然降解 | 第14页 |
| 1.2.3.2 生物降解 | 第14页 |
| 1.2.4 植物对PAEs的吸收富集规律 | 第14-15页 |
| 1.3 邻苯二甲酸酯对微生物的影响 | 第15-19页 |
| 1.3.1 植物内生菌的生物学作用 | 第15-16页 |
| 1.3.1.1 促进植物生长 | 第15页 |
| 1.3.1.2 生物固氮作用 | 第15-16页 |
| 1.3.1.3 增强植株抗逆境、抗病虫害作用 | 第16页 |
| 1.3.1.4 生物修复作用 | 第16页 |
| 1.3.2 植物内生菌的多样性 | 第16-17页 |
| 1.3.3 根际微生物 | 第17-18页 |
| 1.3.3.1 根际微生物的简介 | 第17页 |
| 1.3.3.2 根际微生物的作用 | 第17-18页 |
| 1.3.4 叶际微生物 | 第18页 |
| 1.3.5 PAEs对微生物多样性的影响 | 第18页 |
| 1.3.6 PAEs胁迫对植物生理生化指标的影响 | 第18-19页 |
| 1.4 微生物多样性的研究方法 | 第19-20页 |
| 1.4.1 传统培养方法 | 第19页 |
| 1.4.2 非培养方法 | 第19-20页 |
| 1.5 研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 1.6 研究的主要内容 | 第21-22页 |
| 2 DBP检测方法的建立及残留量测定 | 第22-28页 |
| 2.1 材料和方法 | 第22-25页 |
| 2.1.1 供试材料及试剂 | 第22页 |
| 2.1.2 主要仪器及设备 | 第22-23页 |
| 2.1.3 实验设计 | 第23页 |
| 2.1.3.1 供试土壤处理 | 第23页 |
| 2.1.3.2 供试植株的栽培 | 第23页 |
| 2.1.3.3 样品的采集 | 第23页 |
| 2.1.4 样品的前处理方法 | 第23页 |
| 2.1.4.1 植株样品的前处理方法 | 第23页 |
| 2.1.4.2 土壤样品的前处理方法 | 第23页 |
| 2.1.5 仪器检测方法 | 第23-24页 |
| 2.1.6 标准曲线的建立 | 第24-25页 |
| 2.1.7 添加回收率实验 | 第25页 |
| 2.2 结果与分析 | 第25-27页 |
| 2.2.1 DBP标准曲线的建立 | 第25页 |
| 2.2.2 添加回收率试验结果 | 第25-26页 |
| 2.2.3 DBP在蔬菜根、茎叶、土壤中残留结果 | 第26-27页 |
| 2.3 讨论 | 第27-28页 |
| 2.3.1 DBP在蔬菜和土壤中提取及检测方法的建立 | 第27页 |
| 2.3.2 DBP在蔬菜和土壤中的残留测定 | 第27-28页 |
| 3 纯培养法测定微生物多样性 | 第28-45页 |
| 3.1 材料与方法 | 第28-29页 |
| 3.1.1 供试材料及试剂 | 第28页 |
| 3.1.2 主要仪器及设备 | 第28页 |
| 3.1.3 实验设计 | 第28页 |
| 3.1.3.1 供试土壤处理 | 第28页 |
| 3.1.3.2 供试植株的栽培 | 第28页 |
| 3.1.3.3 样品的采集 | 第28页 |
| 3.1.4 可培养微生物分离鉴定 | 第28-29页 |
| 3.1.4.1 根际微生物分离 | 第28页 |
| 3.1.4.2 叶际微生物分离 | 第28-29页 |
| 3.1.4.3 植物内生菌的分离 | 第29页 |
| 3.1.5 DNA提取及 16Sr DNA的测序 | 第29页 |
| 3.1.6 细菌群落结构多样性分析 | 第29页 |
| 3.2 结果与分析 | 第29-43页 |
| 3.2.1 DBP对四月蔓微生物群落的影响 | 第29-36页 |
| 3.2.1.1 DBP胁迫下的微生物多样性分析 | 第29-30页 |
| 3.2.1.2 不同处理下对四月蔓微生物群落结构多样性影响 | 第30-36页 |
| 3.2.2 DBP对高梗白微生物群落的影响 | 第36-43页 |
| 3.2.2.1 DBP胁迫下的微生物多样性分析 | 第36-37页 |
| 3.2.2.2 不同处理下对高梗白微生物群落结构多样性影响 | 第37-43页 |
| 3.3 讨论 | 第43-45页 |
| 3.3.1 DBP对四月蔓微生物群落的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.2 DBP对高梗白微生物群落的影响 | 第44-45页 |
| 4 高通量测序法测定微生物多样性 | 第45-59页 |
| 4.1 材料与方法 | 第45-46页 |
| 4.1.1 供试材料及试剂 | 第45页 |
| 4.1.2 主要仪器及设备 | 第45页 |
| 4.1.3 实验设计 | 第45页 |
| 4.1.3.1 供试土壤的准备 | 第45页 |
| 4.1.3.2 供试植株的栽培 | 第45页 |
| 4.1.4 样品的采集 | 第45页 |
| 4.1.5 表面消毒 | 第45页 |
| 4.1.6 DNA的提取及PCR扩增 | 第45页 |
| 4.1.7 PCR产物的混样和纯化 | 第45-46页 |
| 4.1.8 生物信息学分析 | 第46页 |
| 4.2 结果与分析 | 第46-57页 |
| 4.2.1 DBP胁迫对四月蔓根际微生物和内生细菌群落的影响 | 第46-52页 |
| 4.2.1.1 四月蔓样品测序结果 | 第46-47页 |
| 4.2.1.2 DBP胁迫下四月蔓中微生物的Alpha多样性 | 第47-48页 |
| 4.2.1.3 DBP对四月蔓微生物群落结构的影响 | 第48-52页 |
| 4.2.2 DBP胁迫对高梗白根际微生物和内生细菌群落的影响 | 第52-57页 |
| 4.2.2.1 高梗白样品测序结果 | 第52-53页 |
| 4.2.2.2 DBP胁迫下高梗白中微生物的Alpha多样性 | 第53页 |
| 4.2.2.3 DBP对高梗白微生物群落结构的影响 | 第53-57页 |
| 4.3 讨论 | 第57-59页 |
| 4.3.1 DBP对四月蔓根际微生物和植物内生细菌的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.2 DBP对高梗白根际微生物和植物内生细菌的影响 | 第58-59页 |
| 5 DBP对酶活性和植物内源激素含量的影响 | 第59-66页 |
| 5.1 材料与方法 | 第59-62页 |
| 5.1.1 供试材料及试剂 | 第59页 |
| 5.1.2 主要仪器及设备 | 第59页 |
| 5.1.3 仪器检测方法 | 第59-60页 |
| 5.1.4 水培实验设计 | 第60-61页 |
| 5.1.5 样品的前处理 | 第61页 |
| 5.1.5.1 酶活测定样品处理 | 第61页 |
| 5.1.5.2 植物内源激素样品处理 | 第61页 |
| 5.1.6 标准曲线的建立 | 第61-62页 |
| 5.1.7 添加回收实验 | 第62页 |
| 5.2 结果与分析 | 第62-65页 |
| 5.2.1 酶活性测定 | 第62-63页 |
| 5.2.2 标准曲线的建立 | 第63页 |
| 5.2.3 添加回收率结果 | 第63-64页 |
| 5.2.4 蔬菜中内源激素的含量测定 | 第64-65页 |
| 5.3 讨论 | 第65-66页 |
| 5.3.1 DBP对植株酶活性的影响 | 第65页 |
| 5.3.2 DBP胁迫对植物内源激素的影响 | 第65-66页 |
| 结论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 攻读研究生期间发表的学术论文 | 第77-78页 |
