| 中文摘要 | 第6-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 第一章 引言 | 第16-53页 |
| 1. 5-HT传感器的研究意义 | 第16-25页 |
| 1.1 抑郁症诊断方法 | 第16-17页 |
| 1.2 5-HT在抑郁发生过程中的重要地位 | 第17-20页 |
| 1.3 血中5-HT与抑郁症的相关性研究进展 | 第20-25页 |
| 2. 目前5-HT的测定方法综述 | 第25-32页 |
| 2.1 目前5-HT测定方法研究进展 | 第25-29页 |
| 2.2 丝网印刷电极的制备与修饰 | 第29-32页 |
| 3. 抑郁症研究的动物模型及本研究中采用的模型 | 第32-36页 |
| 3.1 药物之间相互作用模型-利血平拮抗 | 第32-33页 |
| 3.2 应激模型 | 第33-35页 |
| 3.3 转基因动物模型(animal model of transgene) | 第35-36页 |
| 4. 抑郁症发病机制 | 第36-44页 |
| 4.1 与炎症因子的关联 | 第36-37页 |
| 4.2 与HPA轴关联 | 第37-40页 |
| 4.3 与BDNF关联 | 第40-44页 |
| 5. 抗抑郁药物研究进展 | 第44-50页 |
| 6. 本文的研究内容 | 第50-53页 |
| 6.1 即抛型5-HT丝印传感器的制备及在生物样本中的应用研究 | 第51-52页 |
| 6.2 血与脑中5-HT水平与抑郁行为间的相关性研究 | 第52页 |
| 6.3 慢性应激模型大鼠血5-HT含量的动态变化规律和药物的干预作用与免疫,神经,内分泌系统之间的联系 | 第52-53页 |
| 第二章 5-HT丝印电极的制备及其在生物样本中的应用 | 第53-74页 |
| 1. 实验部分 | 第53-62页 |
| 1.1 试剂及仪器 | 第53-55页 |
| 1.2 5-HT丝印电极的制备及工艺研究 | 第55-59页 |
| 1.3 5-HT丝印电极生物样本分析方法的建立 | 第59-62页 |
| 2. 结果与讨论 | 第62-72页 |
| 2.1 胶体金修饰后的表征 | 第62页 |
| 2.2 电子转移个数考察 | 第62-63页 |
| 2.3 pH值与电位关系考察 | 第63-64页 |
| 2.4 Nafion/CGSPE同CGSPE,Nafion/SPE,SPE的比较 | 第64页 |
| 2.5 Nafion/CGSPE上5-HT标准曲线及线性范围 | 第64-65页 |
| 2.6 Nafion/CGSPE精密度和稳定性研究 | 第65-66页 |
| 2.7 Nafion/CGSPE对干扰物质的排除 | 第66-68页 |
| 2.8 5-HT丝印电极生物样本分析方法的建立 | 第68-72页 |
| 3. 结论 | 第72-74页 |
| 第三章 血5-HT与抑郁行为及脑5-HT的相关性研究 | 第74-84页 |
| 1. 实验部分 | 第74-76页 |
| 1.1 实验材料 | 第74-75页 |
| 1.2 实验方法 | 第75-76页 |
| 2. 结果与讨论 | 第76-82页 |
| 2.1 利血平模型小鼠PRP,SER,BRA 5-HT含量以及行为评分 | 第76-80页 |
| 2.2 利血平模型小鼠BRA,SER,PRP 5-HT含量相关性考察 | 第80-82页 |
| 3. 结论 | 第82-84页 |
| 第四章 慢性应激模型大鼠血5-HT含量的动态变化规律和药物的干预作用与免疫,神经,内分泌系统之间的联系 | 第84-111页 |
| 1. 实验部分 | 第84-90页 |
| 1.1 仪器与试剂 | 第84-86页 |
| 1.2 动物分组及造模 | 第86-87页 |
| 1.3 实验方法 | 第87-90页 |
| 2. 结果与讨论 | 第90-108页 |
| 2.1 小鼠强迫游泳实验 | 第90-91页 |
| 2.2 CUMS大鼠PRP 5-HT与行为相关性 | 第91-99页 |
| 2.3 CUMS大鼠TNF-α和IL-6的变化趋势及药物干预 | 第99-101页 |
| 2.4 CUMS大鼠皮质醇变化及药物干预 | 第101-103页 |
| 2.5 慢性模型大鼠GSH-xp,SOD,MAO活性及药物干预 | 第103-105页 |
| 2.6 大鼠海马5-HT含量和BDNF表达 | 第105-108页 |
| 3. 结论 | 第108-111页 |
| 第五章 结论 | 第111-117页 |
| 参考文献 | 第117-132页 |
| 博士期间发表成果 | 第132-133页 |
| 中英文缩略词表 | 第133-136页 |
| 致谢 | 第136页 |
