| 缩略语表 | 第6-7页 |
| 中文摘要 | 第7-11页 |
| Abstract | 第11-15页 |
| 前言 | 第16-17页 |
| 文献回顾 | 第17-40页 |
| 实验一 NGF 壳聚糖微球的制备及其相关性能的实验研究 | 第40-55页 |
| 1 材料 | 第41-42页 |
| 1.1 主要试剂耗材 | 第41页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第41-42页 |
| 2 方法 | 第42-45页 |
| 2.1 乳化–离子交联法制备 NGF–CMSs | 第42-43页 |
| 2.2 扫描电镜检测 | 第43页 |
| 2.3 粒径分析 | 第43页 |
| 2.4 包埋率和载药率测定 | 第43页 |
| 2.5 红外光谱分析 | 第43页 |
| 2.6 体外微球缓释动力学研究 | 第43-44页 |
| 2.7 缓释液中 NGF 的生物活性测定 | 第44页 |
| 2.8 细胞活力测定 | 第44-45页 |
| 2.9 统计学分析 | 第45页 |
| 3 结果 | 第45-51页 |
| 3.1 NGF–CMSs 特性 | 第45-48页 |
| 3.2 体外缓释动力学研究 | 第48-49页 |
| 3.3 体外生物活性 | 第49页 |
| 3.4 细胞活力（MTT）测定 | 第49-51页 |
| 4 讨论 | 第51-55页 |
| 实验二 NGF 壳聚糖微球–高仿生支架缓释系统的制备及其修复大鼠坐骨神经缺损的实验研究 | 第55-77页 |
| 1 材料 | 第56-57页 |
| 1.1 主要试剂和实验动物 | 第56-57页 |
| 1.2 主要仪器设备 | 第57页 |
| 2 方法 | 第57-63页 |
| 2.1 乳化–离子交联法制备 NGF–CMSs | 第57页 |
| 2.2 NGF–CMSs/CCH 缓释系统的制备 | 第57-59页 |
| 2.3 扫描电镜检测 | 第59-60页 |
| 2.4 缓释动力学检测 | 第60页 |
| 2.5 缓释液中 NGF 的生物活性测定 | 第60页 |
| 2.6 体内评估神经再生 | 第60-63页 |
| 2.7 统计学分析 | 第63页 |
| 3 结果 | 第63-73页 |
| 3.1 NGF–CMSs、CCH 及 NGF–CMSs/CCH 的形态特征 | 第63-65页 |
| 3.2 体外缓释动力学研究 | 第65页 |
| 3.3 体外生物活力测定 | 第65-66页 |
| 3.4 神经电生理检测 | 第66-67页 |
| 3.5 荧光金逆行示踪标记检测 | 第67-69页 |
| 3.6 足迹分析—坐骨神经功能指数 | 第69页 |
| 3.7 组织形态计量学分析 | 第69-71页 |
| 3.8 靶肌肉的形态学分析 | 第71-73页 |
| 4 讨论 | 第73-77页 |
| 小结 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-91页 |
| 个人简历及主要成果 | 第91-92页 |
| 致谢 | 第92页 |
