| 英文缩略词 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1. 引言 | 第10-13页 |
| 2. 实验材料 | 第13-15页 |
| 2.1 主要实验仪器及软件 | 第13-14页 |
| 2.2 主要实验试剂 | 第14页 |
| 2.3 实验动物 | 第14-15页 |
| 3. 实验方法 | 第15-21页 |
| 3.1 鲫饲养方法 | 第15页 |
| 3.2 C50的测定 | 第15页 |
| 3.3 集和解富集实验分组及取样方法 | 第15-16页 |
| 3.4 无酚水的制备 | 第16页 |
| 3.5 组织中苯酚的提取方法 | 第16页 |
| 3.6 组织样品苯酚含量的检测 | 第16-17页 |
| 3.7 血液全基因组提取方法 | 第17-18页 |
| 3.8 全基因组提取质量鉴定 | 第18页 |
| 3.9 微卫星序列扩增引物设计 | 第18-20页 |
| 3.10 PCR 体系及凝胶电泳 | 第20页 |
| 3.11 苯酚处理实验红鲫分组及取样方法 | 第20页 |
| 3.12 数据统计与分析 | 第20-21页 |
| 4. 实验结果 | 第21-36页 |
| 4.1 苯酚对红鲫的 96 h LC50 | 第21页 |
| 4.2 苯酚氯仿萃取液 500 nm-400 nm 全波长扫描图谱 | 第21-23页 |
| 4.3 苯酚氯仿萃取液吸光度值标准曲线 | 第23页 |
| 4.4 苯酚在红鲫体内的富集含量曲线 | 第23-24页 |
| 4.5 苯酚从红鲫体内的解富集过程 | 第24-27页 |
| 4.6 提取红鲫全基因组 DNA 质量鉴定 | 第27页 |
| 4.7 苯酚处理实验红鲫微卫星标记电泳结果 | 第27-34页 |
| 4.8 基因杂合度分析 | 第34页 |
| 4.9 多态性含量分析 | 第34-36页 |
| 5. 讨论 | 第36-39页 |
| 6. 结论 | 第39-40页 |
| 7. 参考文献 | 第40-44页 |
| 8. 文献综述 | 第44-53页 |
| 参考文献 | 第51-53页 |
| 9. 成果目录 | 第53-54页 |
| 10. 致谢 | 第54页 |