| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 缩略词简表 | 第6-11页 |
| 第一章 前言 | 第11-21页 |
| 1.1 引言 | 第11-12页 |
| 1.2 糖肽的合成方法 | 第12-14页 |
| 1.2.1 直线型合成法 | 第12页 |
| 1.2.2 直接缩合法 | 第12-13页 |
| 1.2.3 天然化学连接法 | 第13页 |
| 1.2.4 酶法合成 | 第13-14页 |
| 1.3 糖苷内切酶法合成策略的研究 | 第14-17页 |
| 1.3.1 ENGase的来源及作用 | 第14-15页 |
| 1.3.2 ENGase催化机制的研究 | 第15-16页 |
| 1.3.3 ENGase突变体的研究 | 第16页 |
| 1.3.4 天然糖链供体的研究 | 第16-17页 |
| 1.3.5 多肽受体底物的制备 | 第17页 |
| 1.4 糖肽化合物的应用 | 第17-19页 |
| 1.4.1 标准糖肽在糖组学中糖链结构分析的应用 | 第17-18页 |
| 1.4.2 糖肽药物在抗菌方面的应用 | 第18-19页 |
| 1.4.3 糖肽类药物在抗肿瘤方面的应用 | 第19页 |
| 1.5 课题设计思路和研究意义 | 第19-21页 |
| 第二章 糖链供体底物的制备 | 第21-34页 |
| 2.1 引言 | 第21-22页 |
| 2.2 实验材料 | 第22页 |
| 2.2.1 主要原料和试剂 | 第22页 |
| 2.2.2 仪器 | 第22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-27页 |
| 2.3.1 高甘露型寡糖链供体底物的合成 | 第22-23页 |
| 2.3.2 双天线SCT噁唑啉底物的合成 | 第23-25页 |
| 2.3.3 鸡卵清白蛋白（OVA）提取各种糖型条件的摸索 | 第25-26页 |
| 2.3.4 纯化从OVA中提取的N-寡糖 | 第26-27页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第27-33页 |
| 2.4.1 优化从RB中分离提取Man59GlcNAc的酶催化反应时间 | 第27页 |
| 2.4.2 一锅法合成Man59GlcNAc噁唑啉底物 | 第27-28页 |
| 2.4.3 SGP中分离提取SCT的酶水解条件 | 第28-29页 |
| 2.4.4 一锅法合成Man59GlcNAc噁唑啉底物 | 第29-30页 |
| 2.4.5 不同的糖苷内切酶从OVA中提取寡糖 | 第30-32页 |
| 2.4.6 优化从OVA中分离纯化寡糖链的条件 | 第32-33页 |
| 2.5 本章小结 | 第33-34页 |
| 第三章 多肽受体底物的合成 | 第34-46页 |
| 3.1 引言 | 第34-35页 |
| 3.2 实验材料 | 第35页 |
| 3.2.1 主要原料和试剂 | 第35页 |
| 3.2.2 仪器 | 第35页 |
| 3.3 实验方法 | 第35-44页 |
| 3.3.1 高效液相使用条件 | 第35-36页 |
| 3.3.2 Fmoc-Asn(N-Ac3GlcNAc)-OH的合成 | 第36-37页 |
| 3.3.3 Fmoc法固相合成多肽 | 第37-38页 |
| 3.3.4 多肽受体的合成 | 第38-44页 |
| 3.4 实验结果与分析 | 第44页 |
| 3.4.1 接builing block反应时间和物质的量的确定 | 第44页 |
| 3.4.2 洗涤对多肽合成的影响 | 第44页 |
| 3.5 本章小结 | 第44-46页 |
| 第四章 目标糖肽的合成 | 第46-57页 |
| 4.1 引言 | 第46页 |
| 4.2 实验材料 | 第46-47页 |
| 4.2.1 主要原料和试剂 | 第46页 |
| 4.2.2 仪器 | 第46-47页 |
| 4.3 实验方法 | 第47-56页 |
| 4.3.1 高效液相方法 | 第47页 |
| 4.3.2 目标糖肽的合成 | 第47-56页 |
| 4.4 本章小结 | 第56-57页 |
| 第五章 研究展望 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 附录 | 第62-73页 |
