| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 前言 | 第14-31页 |
| 1. 多糖的研究概括 | 第15-22页 |
| 1.1 多糖的提取 | 第15-17页 |
| 1.1.1 水提法 | 第15-16页 |
| 1.1.2 酸提法 | 第16页 |
| 1.1.3 碱提法 | 第16页 |
| 1.1.4 酶提法 | 第16-17页 |
| 1.2 多糖的分离纯化 | 第17-19页 |
| 1.2.1 膜分离法 | 第17-18页 |
| 1.2.2 分级沉淀法 | 第18页 |
| 1.2.3 季铵盐沉淀法 | 第18页 |
| 1.2.4 凝胶过滤色谱法 | 第18-19页 |
| 1.2.5 离子色谱法 | 第19页 |
| 1.3 多糖的结构分析 | 第19-22页 |
| 1.3.1 单糖组成分析 | 第19-20页 |
| 1.3.2 红外光谱分析 | 第20-21页 |
| 1.3.3 甲基化分析 | 第21页 |
| 1.3.4 多级酸水解 | 第21页 |
| 1.3.5 质谱分析 | 第21-22页 |
| 1.3.6 核磁共振法分析 | 第22页 |
| 2. 海洋软体动物多糖 | 第22-26页 |
| 2.1 抗氧化活性 | 第23页 |
| 2.2 免疫调节活性 | 第23-24页 |
| 2.3 抗肿瘤活性 | 第24-25页 |
| 2.4 抗凝血活性 | 第25页 |
| 2.5 抗病毒活性 | 第25页 |
| 2.6 抗菌活性 | 第25-26页 |
| 2.7 保肝活性 | 第26页 |
| 3 海蛏的研究 | 第26-29页 |
| 3.1 形态与生态特征 | 第26-27页 |
| 3.2 海蛏的生活习性 | 第27页 |
| 3.3 海蛏活性物质的研究 | 第27-29页 |
| 3.3.1 海蛏活性肽的研究 | 第27-28页 |
| 3.3.2 海蛏多糖的研究 | 第28-29页 |
| 4. 本课题的立题背景和研究思路 | 第29-31页 |
| 第二章 缢蛏多糖的提取、分离和结构分析 | 第31-62页 |
| 1 引言 | 第31页 |
| 2 材料与仪器 | 第31-33页 |
| 2.1 材料 | 第31-32页 |
| 2.2 仪器 | 第32-33页 |
| 3 实验方法 | 第33-40页 |
| 3.1 样品的前处理 | 第33页 |
| 3.2 缢蛏多糖的提取 | 第33-34页 |
| 3.2.1 热水提取 | 第33-34页 |
| 3.2.2 碱提取 | 第34页 |
| 3.3 酶法脱蛋白 | 第34页 |
| 3.4 缢蛏多糖的分离纯化 | 第34-35页 |
| 3.4.1 离子交换柱层析 | 第34-35页 |
| 3.4.2 凝胶渗透柱层析 | 第35页 |
| 3.5 缢蛏多糖的理化性质分析 | 第35-37页 |
| 3.5.1 总糖含量的测定 | 第35页 |
| 3.5.2 蛋白含量的测定 | 第35-36页 |
| 3.5.3 硫酸根含量的测定 | 第36-37页 |
| 3.6 相对分子质量测定及纯度分析 | 第37页 |
| 3.7 单糖组成分析 | 第37-38页 |
| 3.8 红外光谱分析 | 第38页 |
| 3.9 甲基化分析 | 第38-39页 |
| 3.9.1 试剂预处理 | 第38页 |
| 3.9.2 甲基化反应 | 第38-39页 |
| 3.9.3 甲基化多糖的全水解 | 第39页 |
| 3.9.4 全水解产物的还原 | 第39页 |
| 3.9.5 乙酰化反应 | 第39页 |
| 3.9.6 GC-MS分析 | 第39页 |
| 3.10 核磁分析 | 第39-40页 |
| 4 实验结果 | 第40-60页 |
| 4.1 缢蛏前处理结果 | 第40页 |
| 4.2 缢蛏粗多糖提取结果 | 第40页 |
| 4.3 缢蛏粗多糖除蛋白结果 | 第40-41页 |
| 4.4 缢蛏多糖的分离纯化 | 第41-43页 |
| 4.4.1 缢蛏多糖的分离 | 第41-42页 |
| 4.4.2 缢蛏多糖的纯化 | 第42-43页 |
| 4.5 缢蛏多糖的理化性质测定结果 | 第43-46页 |
| 4.5.1 总糖含量测定结果 | 第43-44页 |
| 4.5.2 蛋白含量测定结果 | 第44-45页 |
| 4.5.3 硫酸根含量测定结果 | 第45-46页 |
| 4.6 样品相对分子质量测定及纯度分析结果 | 第46-48页 |
| 4.7 单糖组成分析结果 | 第48-50页 |
| 4.8 红外光谱分析结果 | 第50-51页 |
| 4.9 甲基化分析结果 | 第51-54页 |
| 4.10 核磁共振分析结果 | 第54-60页 |
| 5 本章小结 | 第60-62页 |
| 第三章 细长竹蛏多糖的提取、分离和结构分析 | 第62-84页 |
| 1 引言 | 第62页 |
| 2 材料与仪器 | 第62-63页 |
| 2.1 材料 | 第62-63页 |
| 2.2 仪器 | 第63页 |
| 3 实验方法 | 第63-67页 |
| 3.1 样品的前处理 | 第63页 |
| 3.2 细长竹蛏多糖的提取 | 第63页 |
| 3.2.1 热水提取 | 第63页 |
| 3.2.2 碱提取 | 第63页 |
| 3.3 酶法脱蛋白 | 第63-64页 |
| 3.4 细长竹蛏多糖的分离纯化 | 第64页 |
| 3.5 细长竹蛏多糖理化性质的测定 | 第64-65页 |
| 3.5.1 总糖含量的测定 | 第64页 |
| 3.5.2 蛋白含量的测定 | 第64页 |
| 3.5.3 硫酸根含量测定 | 第64页 |
| 3.5.4 氨基糖含量的测定 | 第64-65页 |
| 3.5.5 糖醛酸含量的测定 | 第65页 |
| 3.6 单糖组成分析 | 第65-66页 |
| 3.7 寡糖分析 | 第66页 |
| 3.7.1 部分酸水解条件的摸索 | 第66页 |
| 3.7.2 降解液的TLC分析 | 第66页 |
| 3.7.3 寡糖的制备 | 第66页 |
| 3.7.4 负离子质谱 | 第66页 |
| 3.8 多级酸水解分析 | 第66-67页 |
| 3.8.1 不同浓度的酸水解多糖 | 第66-67页 |
| 3.8.2 单糖组成分析 | 第67页 |
| 3.9 甲基化分析 | 第67页 |
| 4 实验结果 | 第67-82页 |
| 4.1 细长竹蛏前处理结果 | 第67-68页 |
| 4.2 细长竹蛏多糖提取结果 | 第68页 |
| 4.3 细长竹蛏多糖除蛋白结果 | 第68页 |
| 4.4 细长竹蛏多糖的分离纯化 | 第68-70页 |
| 4.5 细长竹蛏多糖的理化性质测定结果 | 第70-72页 |
| 4.6 单糖组成分析结果 | 第72-75页 |
| 4.7 寡糖分析结果 | 第75-79页 |
| 4.7.1 降解条件摸索的结果 | 第75-76页 |
| 4.7.2 部分酸降解液的Bio-Gel P2凝胶柱层析结果 | 第76-77页 |
| 4.7.3 寡糖分析结果 | 第77-79页 |
| 4.8 多级酸水解结果 | 第79-82页 |
| 5 实验小结 | 第82-84页 |
| 第四章 两种海蛏多糖的生物活性评价 | 第84-91页 |
| 1 引言 | 第84-85页 |
| 2 材料与仪器 | 第85-86页 |
| 2.1 材料 | 第85页 |
| 2.2 仪器 | 第85-86页 |
| 3 实验方法 | 第86-87页 |
| 3.1 免疫活性的测定 | 第86-87页 |
| 3.1.1 小鼠Raw 264.7巨噬细胞的培养 | 第86页 |
| 3.1.2 Raw264.7细胞吞噬中性红实验 | 第86-87页 |
| 3.2 抗乙肝病毒的测定 | 第87页 |
| 3.2.1 HepG2.2.15细胞培养 | 第87页 |
| 3.2.2 HBeAg和HBsAg的检测 | 第87页 |
| 4 实验结果 | 第87-90页 |
| 4.1 免疫活性测定结果 | 第87-89页 |
| 4.2 抗乙肝病毒活性的测定结果 | 第89-90页 |
| 5 本章小结 | 第90-91页 |
| 结语 | 第91-93页 |
| 创新点 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
| 个人简历 | 第106页 |
| 参与发表的文章 | 第106页 |