| 符号说明 | 第4-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1.前言 | 第12-23页 |
| 1.1 植物花青素的基本结构及分类 | 第12-13页 |
| 1.2 花青素生物合成途径 | 第13-15页 |
| 1.3 花青素合成途径中的关键结构基因 | 第15-18页 |
| 1.3.1 查尔酮合成酶 | 第15-16页 |
| 1.3.2 查尔酮异构酶 | 第16页 |
| 1.3.3 黄烷酮 3-羟化酶 | 第16-17页 |
| 1.3.4 二氢黄酮醇4还原酶 | 第17页 |
| 1.3.5 花色素合成酶 | 第17-18页 |
| 1.4 参与花青素生物合成的转录调控因子MYB | 第18-21页 |
| 1.4.1 MYB转录因子的结构与分类 | 第18-19页 |
| 1.4.2 R2R3MYB转录因子在花青素生物合成中的调控作用 | 第19-21页 |
| 1.4.3 R2R3MYB转录因子在花青素合成过程中对光的响应 | 第21页 |
| 1.5 本研究的目的及意义 | 第21-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-31页 |
| 2.1 试验材料 | 第23-24页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第23页 |
| 2.1.2 菌株 | 第23页 |
| 2.1.3 载体 | 第23页 |
| 2.1.4 培养基成分 | 第23-24页 |
| 2.1.5 抗生素浓度 | 第24页 |
| 2.1.6 PCR引物的合成 | 第24页 |
| 2.2 试验处理 | 第24-25页 |
| 2.2.1 光质试验处理 | 第24-25页 |
| 2.2.2 茄子不同组织中SmMYB转录因子的表达分析 | 第25页 |
| 2.3 测定项目与方法 | 第25-30页 |
| 2.3.1 植物组织总RNA的提取 | 第25-26页 |
| 2.3.2 cDNA第一链合成 | 第26页 |
| 2.3.3PCR扩增 | 第26-27页 |
| 2.3.4 回收PCR产物 | 第27页 |
| 2.3.5 克隆载体的链接及大肠杆菌T1的转化 | 第27-28页 |
| 2.3.6 大肠杆菌感受态的转化 | 第28页 |
| 2.3.7 荧光定量的测定 | 第28页 |
| 2.3.8 转录组数据分析方法 | 第28-30页 |
| 2.4 数据统计与分析 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-52页 |
| 3.1 茄子R2R3MYB转录因子的信息学分析 | 第31-43页 |
| 3.1.1 茄子中R2R3MYB家族的识别与鉴定 | 第31-33页 |
| 3.1.2 茄子R2R3MYB基因家族进化树分析 | 第33-36页 |
| 3.1.3 茄子R2R3MYB结构特征分析 | 第36-41页 |
| 3.1.4 花青素合成相关SmR2R3MYB基因在不同LED光质下的表达分析 | 第41-43页 |
| 3.2 不同茄皮组织中的转录组数据分析 | 第43-49页 |
| 3.2.1 reads比对参考基因组、转录本注释、样本基因表达丰度统计 | 第43-45页 |
| 3.2.2 差异表达基因统计 | 第45-46页 |
| 3.2.3 差异表达基因的GO分类 | 第46页 |
| 3.2.4 KEGG代谢通路分析 | 第46-47页 |
| 3.2.5 差异表达基因InterPro Scan功能注释 | 第47页 |
| 3.2.6 花青素合成相关基因的筛选及验证 | 第47-49页 |
| 3.3 SmMYB6的克隆和表达载体的构建 | 第49-52页 |
| 3.3.1 SmMYB6的克隆 | 第49-50页 |
| 3.3.2 SmMYB6表达载体的构建 | 第50-52页 |
| 4 讨论 | 第52-57页 |
| 4.1 茄子R2R3MYB家族的信息学分析 | 第52-54页 |
| 4.2 茄皮转录组数据分析 | 第54-56页 |
| 4.3 SmMYB6的克隆和表达载体的构建 | 第56-57页 |
| 5 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-69页 |
| 附录 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 攻读硕士期间发表论文情况 | 第71页 |
