中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
缩略语 | 第13-15页 |
前言 | 第15-18页 |
研究现状、成果 | 第15-17页 |
研究目的、方法 | 第17-18页 |
一、间歇低氧对大鼠海马炎症因子及JNK蛋白表达的影响 | 第18-41页 |
1.1 对象和方法 | 第18-27页 |
1.1.1 实验动物 | 第18页 |
1.1.2 主要设备试剂及来源 | 第18-20页 |
1.1.3 实验动物分组 | 第20-21页 |
1.1.4 间歇低氧大鼠模型制作 | 第21-22页 |
1.1.5 标本制备 | 第22-23页 |
1.1.6 ELISA法测定海马组织TNF-α及IL-6操作步骤 | 第23-24页 |
1.1.7 免疫组化法检测大鼠海马组织P-JNK蛋白表达情况具体步骤 | 第24-25页 |
1.1.8 Western blot检测大鼠海马组织P-JNK蛋白表达情况具体步骤 | 第25-27页 |
1.1.9 统计学方法 | 第27页 |
1.2 结果 | 第27-36页 |
1.2.1 大鼠海马组织TNF-α水平变 | 第27-29页 |
1.2.2 大鼠海马组织IL-6水平变化 | 第29-30页 |
1.2.3 大鼠海马组织P-JNK蛋白免疫组化检测结果 | 第30-34页 |
1.2.4 大鼠海马组织P-JNK蛋白Western blot检测结果 | 第34-35页 |
1.2.5 TNF-a、IL-6与P-JNK的相关分析 | 第35-36页 |
1.3 讨论 | 第36-40页 |
1.3.1 慢性间歇性低氧模型的建立方法 | 第36-38页 |
1.3.2 低氧与炎症反应 | 第38-39页 |
1.3.3 低氧与JNK信号通路 | 第39-40页 |
1.4 小结 | 第40-41页 |
二、中药川芎嗪干预作用研究 | 第41-55页 |
2.1 对象和方法 | 第41-50页 |
2.1.1 实验动物 | 第41页 |
2.1.2 主要设备试剂及来源 | 第41-43页 |
2.1.3 实验动物分组 | 第43页 |
2.1.4 间歇低氧大鼠模型制作 | 第43-45页 |
2.1.5 标本制备 | 第45-46页 |
2.1.6 ELISA法测定海马组织TNF-α及IL-6操作步骤 | 第46-47页 |
2.1.7 免疫组化法检测大鼠海马组织P-JNK蛋白表达情况具体步骤 | 第47-48页 |
2.1.8 Western blot检测大鼠海马组织P-JNK蛋白表达情况具体步骤 | 第48-50页 |
2.1.9 统计学方法 | 第50页 |
2.2 结果 | 第50-53页 |
2.2.1 大鼠海马组织TNF-α水平变 | 第50-51页 |
2.2.2 大鼠海马组织IL-6水平变化 | 第51页 |
2.2.3 大鼠海马组织P-JNK蛋白免疫组化检测结果 | 第51-52页 |
2.2.4 大鼠海马组织P-JNK蛋白Western blot检测结果 | 第52-53页 |
2.3 讨论 | 第53-54页 |
2.4 小结 | 第54-55页 |
全文结论 | 第55-56页 |
论文创新点 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-62页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第62-63页 |
综述 间歇低氧导致脑损伤的炎症机制及JNK信号转导通路作用 | 第63-84页 |
综述参考文献 | 第74-84页 |
致谢 | 第84页 |