| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第16-26页 |
| 1.1 内质网 | 第16-19页 |
| 1.1.1 内质网简介 | 第16页 |
| 1.1.2 内质网应激 | 第16-18页 |
| 1.1.3 内质网应激与细胞凋亡 | 第18-19页 |
| 1.2 T细胞 | 第19-22页 |
| 1.2.1 T细胞简介 | 第19-21页 |
| 1.2.2 T细胞与AICD | 第21-22页 |
| 1.3 Sel1L分子 | 第22-23页 |
| 1.3.1 Sel1L分子简介 | 第22页 |
| 1.3.2 Sel1L基因与内质网应激 | 第22-23页 |
| 1.4 本实验的研究目的、方法、实验设计及研究意义 | 第23-26页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第23页 |
| 1.4.2 研究方法 | 第23页 |
| 1.4.3 实验设计 | 第23-25页 |
| 1.4.4 研究意义 | 第25-26页 |
| 第二章 内质网应激对T细胞活化诱导凋亡的调控 | 第26-36页 |
| 2.1 实验材料 | 第26-28页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第26页 |
| 2.1.2 主要溶液的配制 | 第26-27页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第27页 |
| 2.1.4 主要仪器及耗材 | 第27-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-29页 |
| 2.2.1 小鼠脾细胞的制备 | 第28页 |
| 2.2.2 小鼠脾细胞和EL-4 细胞AICD的体外诱导 | 第28-29页 |
| 2.2.3 不同浓度CD3抗体对T细胞AICD发生的影响 | 第29页 |
| 2.2.4 DTT或 4-PBA对小鼠T细胞AICD的处理 | 第29页 |
| 2.2.5 细胞表面标记染色 | 第29页 |
| 2.3 实验结果 | 第29-33页 |
| 2.3.1 T细胞体外诱导模型的建立 | 第29-31页 |
| 2.3.2 不同浓度CD3抗体对T细胞AICD发生的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.3 内质网应激对T细胞AICD的影响 | 第32-33页 |
| 2.4 讨论 | 第33-36页 |
| 第三章 内质网应激对T细胞定向敲除Sel1L小鼠T细胞活化诱导凋亡的影响 | 第36-47页 |
| 3.1 实验材料 | 第36-38页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第36-37页 |
| 3.1.2 主要溶液的配制 | 第37-38页 |
| 3.1.3 实验动物 | 第38页 |
| 3.1.4 主要仪器及耗材 | 第38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-41页 |
| 3.2.1 小鼠基因型鉴定 | 第38-40页 |
| 3.2.2 CD3+T细胞的磁分选 | 第40页 |
| 3.2.3 蛋白质提取 | 第40页 |
| 3.2.4 Western Blotting | 第40-41页 |
| 3.2.5 T细胞定向敲除Sel1L小鼠脾细胞AICD的体外诱导 | 第41页 |
| 3.2.6 DTT或 4-PBA对T细胞定向敲除Sel1L小鼠脾细胞AICD的处理 | 第41页 |
| 3.2.7 细胞表面标记染色 | 第41页 |
| 3.3 实验结果 | 第41-45页 |
| 3.3.1 Lck-Cre小鼠和Sel1L flox小鼠繁殖、生长及鉴定 | 第41-42页 |
| 3.3.2 LckCre × Sel1Lfl/fl小鼠脾脏T细胞中Sel1L的表达水平 | 第42-43页 |
| 3.3.3 内质网应激对T细胞定向敲除Sel1L小鼠T细胞活化诱导凋亡的调控。 | 第43-45页 |
| 3.4 讨论 | 第45-47页 |
| 第四章 主要结论和展望 | 第47-49页 |
| 4.1 主要结论 | 第47页 |
| 4.2 展望 | 第47-49页 |
| 参考文献 | 第49-59页 |
| 文献综述 | 第59-67页 |
| 参考文献 | 第64-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 攻读硕士学位期间发表的文章 | 第68页 |
