中文摘要 | 第4-7页 |
abstract | 第7-9页 |
研究背景 | 第13-19页 |
参考文献 | 第15-19页 |
一、日本血吸虫感染小鼠慢性致病过程中ILC2s分化及其效应因子的免疫应答特征 | 第19-46页 |
(一)材料与试剂 | 第19-21页 |
1.实验仪器 | 第19-20页 |
2.主要试剂和耗材 | 第20页 |
3.主要溶液配制 | 第20-21页 |
(二)实验方法 | 第21-28页 |
1.动物模型的建立 | 第21-22页 |
2. ILC2s的分离及检测 | 第22-24页 |
3.肝、脾、肠系膜淋巴结淋巴细胞表面共刺激分子、细胞因子的检测 | 第24-25页 |
4.统计学处理 | 第25页 |
5.脾淋巴细胞培养 | 第25页 |
6.培养上清中细胞因子的检测 | 第25-26页 |
7.组织石蜡切片的制备 | 第26页 |
8.Masson染色 | 第26-28页 |
(三)实验结果 | 第28-40页 |
1.日本血吸虫感染小鼠慢性致病过程中ILC2s在肝脏中的动态变化 | 第28-30页 |
2.日本血吸虫感染小鼠慢性致病过程中ILC2s在脾脏中的动态变化 | 第30-32页 |
3.日本血吸虫感染小鼠慢性致病过程中ILC2s在肠系膜淋巴结中的动态变化 | 第32-33页 |
4.日本血吸虫感染小鼠慢性致病过程中ILC2s在肝、脾、肠系膜淋巴结淋巴细胞中的动态变化 | 第33-34页 |
5.日本血吸虫感染鼠慢性致病过程中脾淋巴细胞经SEA诱导 72h培养上清IL-13 表达水平 | 第34-35页 |
6.日本血吸虫感染鼠慢性致病过程中脾淋巴细胞中ILC2s的效应因子IL-13的动态变化 | 第35-37页 |
7.日本血吸虫感染鼠慢性致病过程中肠系膜淋巴结淋巴细胞中ILC2s的效应因子IL-13 的动态变化 | 第37-38页 |
8.小鼠感染日本血吸虫后肝纤维化的观察 | 第38-39页 |
9.小鼠感染日本血吸虫后不同病期肝虫卵肉芽肿细胞IL-13 表达水平的观察 | 第39-40页 |
(四)讨论 | 第40-43页 |
参考文献 | 第43-46页 |
二、ICOSL/ICOS信号调控日本血吸虫感染小鼠ILC2s分化及其效应因子对小鼠免疫病理及肝纤维化的影响 | 第46-65页 |
(一)材料与试剂 | 第46-47页 |
1.实验仪器 | 第46页 |
2.主要试剂和耗材 | 第46-47页 |
(二)实验方法 | 第47-49页 |
1. ICOSL-KO小鼠的引进及培育 | 第47-48页 |
2.动物模型的建立 | 第48页 |
3.脾淋巴细胞悬液制备 | 第48页 |
4.肠系膜淋巴结淋巴细胞悬液的制备 | 第48页 |
5.脾、淋巴结、肝脏淋巴细胞表面分子、胞内因子染色 | 第48页 |
6.脾淋巴细胞培养 | 第48-49页 |
7.培养上清中细胞因子的检测 | 第49页 |
8.组织石蜡切片的制备 | 第49页 |
9.Masson染色 | 第49页 |
10.统计学处理 | 第49页 |
(三)实验结果 | 第49-61页 |
1.ICOSL-KO(ICOSL-/-)、ICOSL+/-、野生型鼠基因型鉴定 | 第49-50页 |
2.ICOSL-KO小鼠日本血吸虫感染疾病模型中ILC2s在肝淋巴细胞中的比列显著下调 | 第50-52页 |
3.ICOSL-KO小鼠日本血吸虫感染疾病模型中ILC2s在脾淋巴细胞中的比列显著下调 | 第52-54页 |
4.ICOSL-KO小鼠日本血吸虫感染疾病模型中ILC2s在肠系膜淋巴结淋巴细胞中的比例显著下调 | 第54-56页 |
5.ICOSL-KO小鼠脾淋巴细胞经SEA体外诱导培养上清IL-13 呈下调表达 | 第56页 |
6. ICOSL-KO小鼠在日本血吸虫感染鼠慢性致病过程中脾淋巴细胞中ILC2s的效应因子IL-13 呈下调表达 | 第56-58页 |
7. ICOSL-KO小鼠在日本血吸虫感染鼠慢性致病过程中肠系膜淋巴结淋巴细胞中ILC2s的效应因子IL-13 呈下调表达 | 第58-59页 |
8. ICOSL-KO小鼠感染日本血吸虫后肝纤维化的观察 | 第59-60页 |
9. ICOSL-KO小鼠及其野生型对照小鼠感染日本血吸虫后肝虫卵肉芽肿细胞IL-13 的比较 | 第60-61页 |
(四)讨论 | 第61-63页 |
参考文献 | 第63-65页 |
结论 | 第65-66页 |
英文缩写词表 | 第66-67页 |
综述 ILC2介导感染性疾病免疫病理的研究进展 | 第67-76页 |
参考文献 | 第71-76页 |
硕士学习期间参与发表和待发表的论文 | 第76-77页 |
基金项目 | 第77-78页 |
致谢 | 第78-79页 |