摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4-5页 |
1 绪论 | 第9-16页 |
1.1 孕马血清促性腺激素 | 第9-10页 |
1.1.1 PMSG的生物结构 | 第9页 |
1.1.2 PMSG的生物学作用 | 第9-10页 |
1.1.3 PMSG的纯化应用 | 第10页 |
1.2 糖蛋白激素色谱分离方法 | 第10-11页 |
1.2.1 离子交换色谱 | 第10-11页 |
1.2.2 凝胶过滤色谱 | 第11页 |
1.2.3 羟基磷灰石色谱 | 第11页 |
1.2.4 亲和色谱 | 第11页 |
1.2.5 疏水作用色谱与反相色谱 | 第11页 |
1.3 PMSG的应用研究进展 | 第11-14页 |
1.3.1 PMSG在诱发发情中的应用 | 第11-12页 |
1.3.2 PMSG在超数排卵中的应用 | 第12-13页 |
1.3.3 PMSG在提高狐狸繁殖效率中的应用 | 第13-14页 |
1.4 研究目的及意义 | 第14-16页 |
2 孕马血清PMSG的粗提及纯化 | 第16-23页 |
2.1 实验材料 | 第16-17页 |
2.1.1 实验药品 | 第16页 |
2.1.2 实验仪器 | 第16-17页 |
2.2 实验方法 | 第17-19页 |
2.2.1 PMSG的粗提步骤 | 第17页 |
2.2.2 粗提PMSG生物活性测定 | 第17页 |
2.2.3 阴离子交换层析条件优化 | 第17-18页 |
2.2.4 阴离子交换批量层析 | 第18页 |
2.2.5 阳离子交换柱层析 | 第18页 |
2.2.6 PMSG蛋白含量测定 | 第18-19页 |
2.2.7 ELISA法检测PMSG生物活性 | 第19页 |
2.3 实验结果 | 第19-21页 |
2.3.1 偏磷酸-乙醇沉淀法提取PMSG及其生物活性测定 | 第19-20页 |
2.3.2 阴离子交换剂对PMSG吸附的pH及盐浓度依赖性 | 第20页 |
2.3.3 粗提PMSG蛋白的连续两步层析纯化 | 第20-21页 |
2.4 讨论 | 第21-22页 |
2.5 本章小结 | 第22-23页 |
3 PMSG对幼龄小鼠雌性生殖器官的影响 | 第23-31页 |
3.1 实验材料 | 第23-24页 |
3.1.1 实验动物 | 第23页 |
3.1.2 实验药品 | 第23页 |
3.1.3 固定液和染色液配制 | 第23页 |
3.1.4 实验仪器 | 第23-24页 |
3.2 实验方法 | 第24-26页 |
3.2.1 PMSG处理剂量的筛选 | 第24页 |
3.2.2 幼鼠的PMSG处理 | 第24页 |
3.2.3 卵巢和子宫组织切片制作及染色 | 第24-25页 |
3.2.4 观察及测量 | 第25-26页 |
3.2.5 理数据处理 | 第26页 |
3.3 实验结果 | 第26-29页 |
3.3.1 PMSG处理浓度的筛选 | 第26页 |
3.3.2 PMSG处理对不同日龄幼鼠卵巢增重的影响 | 第26-27页 |
3.3.3 PMSG处理对不同日龄幼鼠卵泡发育的影响 | 第27-28页 |
3.3.4 PMSG处理对幼龄雌鼠子宫增重的影响 | 第28页 |
3.3.5 PMSG处理对幼龄雌鼠子宫结构的影响 | 第28-29页 |
3.4 讨论 | 第29-30页 |
3.5 本章小结 | 第30-31页 |
4 PMSG诱导未进入初情期雌性蓝狐生殖器官的发育 | 第31-36页 |
4.1 实验材料 | 第31页 |
4.1.1 实验动物及其实验实施时间 | 第31页 |
4.1.2 实验药品 | 第31页 |
4.2 实验方法 | 第31-32页 |
4.2.1 雌性蓝狐的激素处理 | 第31页 |
4.2.2 发情观察与交配 | 第31页 |
4.2.3 卵巢和子宫组织切片制作 | 第31-32页 |
4.2.4 卵巢和子宫的组织观察 | 第32页 |
4.2.5 数据处理 | 第32页 |
4.3 实验结果 | 第32-34页 |
4.3.1 不同激素处理对诱发雌性蓝狐发情的影响 | 第32页 |
4.3.2 不同激素处理对蓝狐卵泡发育的影响 | 第32-33页 |
4.3.3 不同激素处理对蓝狐卵巢组织结构变化的影响 | 第33页 |
4.3.4 不同激素处理对蓝狐子宫结构的影响 | 第33-34页 |
4.4 讨论 | 第34-35页 |
4.5 本章小结 | 第35-36页 |
结论 | 第36-37页 |
参考文献 | 第37-41页 |
附录 | 第41-42页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第42-43页 |
致谢 | 第43-44页 |