| 0．前言 | 第10-11页 |
| 1．文献综述 | 第11-24页 |
| 1．1 脑缺血再灌注 | 第11-12页 |
| 1．2 脑缺血再灌注动物模型研究 | 第12-13页 |
| 1．2．1 动物种类的选择 | 第12页 |
| 1．2．2 麻醉剂的选择与应用 | 第12-13页 |
| 1．2．3 动物模型类别 | 第13页 |
| 1．3 脑缺血治疗现状 | 第13-16页 |
| 1．3．1 神经保护剂 | 第13-14页 |
| 1．3．2 抗血小板药 | 第14-15页 |
| 1．3．3 溶栓治疗 | 第15页 |
| 1．3．4 脑内移植 | 第15页 |
| 1．3．5 天然药物 | 第15-16页 |
| 1．4 脑缺血再灌注与细胞凋亡 | 第16-18页 |
| 1．4．1 细胞凋亡的定义、特征及意义 | 第16-17页 |
| 1．4．2 脑缺血再灌注细胞凋亡发生的时间 | 第17页 |
| 1．4．3 脑缺血再灌注损伤细胞凋亡发生的部位 | 第17-18页 |
| 1．5 脑缺血再灌注时神经元损伤机制 | 第18-19页 |
| 1．5．1 兴奋性氨基酸和钙超载 | 第18-19页 |
| 1．5．2 氧自由基和一氧化氮 | 第19页 |
| 1．6 缺血再灌注时细胞凋亡的相关基因 | 第19-21页 |
| 1．6．1 Bcl-2 | 第19-20页 |
| 1．6．2 p53 | 第20页 |
| 1．6．3 Caspases | 第20页 |
| 1．6．4 热休克蛋白(HSP) | 第20-21页 |
| 1．7 缺血后神经细胞凋亡的防治 | 第21-22页 |
| 1．7．1 抗氧化剂 | 第21页 |
| 1．7．2 Caspase抑制剂 | 第21页 |
| 1．7．3 激素类 | 第21-22页 |
| 1．7．4 Ca~(2+)拮抗剂 | 第22页 |
| 1．7．5 神经生长因子 | 第22页 |
| 1．8 研究目的及意义 | 第22-24页 |
| 2．梓醇对脑缺血受损神经的保护作用 | 第24-34页 |
| 2．1 实验材料及设备 | 第24-25页 |
| 2．1．1 实验材料 | 第24-25页 |
| 2．1．2 实验设备 | 第25页 |
| 2．2 实验方法 | 第25-29页 |
| 2．2．1 动物分组及给药 | 第25页 |
| 2．2．2 行为实验 | 第25-26页 |
| 2．2．3 缺血再灌注模型 | 第26-27页 |
| 2．2．4 脑组织获取 | 第27页 |
| 2．2．5 尼氏小体染色(Nissl染色) | 第27页 |
| 2．2．6 海马CA1区存活细胞计数 | 第27-28页 |
| 2．2．7 MAP-2免疫活性 | 第28页 |
| 2．2．8 梓醇对认知能力自然低下沙土鼠认知水平的影响 | 第28-29页 |
| 2．2．9 统计学处理 | 第29页 |
| 2．3 实验结果 | 第29-32页 |
| 2．3．1 行为实验 | 第29页 |
| 2．3．2 Nissl染色 | 第29页 |
| 2．3．3 MAP-2的免疫活性 | 第29-30页 |
| 2．3．4 梓醇对认知能力自然低下沙土鼠认知水平的影响 | 第30-32页 |
| 2．4 讨论 | 第32页 |
| 2．5 小结 | 第32-34页 |
| 3．梓醇神经保护作用中的抗凋亡机制 | 第34-42页 |
| 3．1 实验材料及设备 | 第34-35页 |
| 3．1．1 实验材料 | 第34-35页 |
| 3．1．2 实验设备 | 第35页 |
| 3．2 实验方法 | 第35-37页 |
| 3．2．1 动物分组及给药 | 第35页 |
| 3．2．2 脑缺血再灌注模型的建立 | 第35页 |
| 3．2．3 脑组织获取 | 第35-36页 |
| 3．2．4 电镜制样、观察 | 第36页 |
| 3．2．5 流式细胞仪分析 | 第36页 |
| 3．2．6 氯化三苯基四氮唑(TTC)染色 | 第36-37页 |
| 3．2．7 梗死面积百分比的确定 | 第37页 |
| 3．2．8 免疫组化枪测Bax蛋白和Bcl-2免疫活性 | 第37页 |
| 3．3 实验结果 | 第37-39页 |
| 3．3．1 透射电镜观察 | 第37页 |
| 3．3．2 流式细胞术检测细胞凋亡数 | 第37-38页 |
| 3．3．3 梗死面积百分比 | 第38页 |
| 3．3．4 海马CA1区Bax和Bcl-2阳性细胞 | 第38-39页 |
| 3．4 讨论 | 第39-41页 |
| 3．5 小结 | 第41-42页 |
| 4．梓醇神经保护作用中的抗氧化机制 | 第42-50页 |
| 4．1 实验材料及设备 | 第42-43页 |
| 4．1．1 实验材料 | 第42页 |
| 4．1．2 实验设备 | 第42-43页 |
| 4．2 实验方法 | 第43-46页 |
| 4．2．1 动物分组及给药 | 第43页 |
| 4．2．2 动物模型的建立 | 第43页 |
| 4．2．3 脑组织获取 | 第43页 |
| 4．2．4 组织蛋白测定 | 第43-44页 |
| 4．2．5 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-PX)活力 | 第44页 |
| 4．2．6 超氧化物歧化酶(SOD)活力 | 第44-45页 |
| 4．2．7 过氧化氢酶(CAT)活力 | 第45页 |
| 4．2．8 丙二醛(MDA)含量 | 第45页 |
| 4．2．9 一氧化氮合成酶(NOS)活力 | 第45-46页 |
| 4．2．10 统计学处理 | 第46页 |
| 4．3 实验结果 | 第46-47页 |
| 4．3．1 GSH-PX、SOD和CAT的酶活 | 第46页 |
| 4．3．2 MDA的含量 | 第46页 |
| 4．3．3 TNOS和iNOS活性 | 第46-47页 |
| 4．4 讨论 | 第47-49页 |
| 4．5 小结 | 第49-50页 |
| 5．结论与展望 | 第50-51页 |
| 5．1 结论 | 第50页 |
| 5．2 展望 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-58页 |
| 硕士期间发表论文 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
