摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-8页 |
1 引言 | 第12-20页 |
1.1 黑籽南瓜研究进展 | 第12-14页 |
1.1.1 抗性机制研究进展 | 第12-13页 |
1.1.2 分子方面研究进展 | 第13-14页 |
1.2 瓜类枯萎病研究进展 | 第14-15页 |
1.3 光合作用 | 第15-16页 |
1.4 过氧化物酶和氧化伤害物质 | 第16-18页 |
1.5 NBS类抗病基因 | 第18页 |
1.6 荧光定量PCR技术 | 第18-19页 |
1.7 本试验的目的和意义 | 第19-20页 |
2 试验材料和方法 | 第20-30页 |
2.1 试验材料 | 第20页 |
2.1.1 营养土 | 第20页 |
2.1.2 营养液 | 第20页 |
2.2 菌种与培养基 | 第20页 |
2.2.1 菌种 | 第20页 |
2.2.2 培养基 | 第20页 |
2.3 试验耗材与仪器 | 第20-21页 |
2.3.1 耗材 | 第20-21页 |
2.3.2 试验仪器 | 第21页 |
2.4 试验方法 | 第21-22页 |
2.4.1 菌种培养及菌孢子悬浮液制备 | 第21页 |
2.4.2 供试幼苗准备 | 第21页 |
2.4.3 接种 | 第21-22页 |
2.4.4 病情指数统计 | 第22页 |
2.5 光合生理指标的测定 | 第22-23页 |
2.5.1 气体交换参数的测定 | 第23页 |
2.5.2 叶绿素a荧光参数的测定 | 第23页 |
2.6 抗氧化酶活性和抗氧化物含量的测定 | 第23-26页 |
2.6.1 配置匀浆介质配置 | 第23-24页 |
2.6.2 组织匀浆的制备 | 第24页 |
2.6.3 试验操作 | 第24-26页 |
2.7 黑籽南瓜NBS类抗病基因片段HQRGA2表达分析 | 第26-29页 |
2.7.1 黑籽南瓜总RNA提取 | 第26-28页 |
2.7.2 荧光定量PCR反应第一链cDNA的合成 | 第28页 |
2.7.3 荧光定量PCR引物 | 第28-29页 |
2.7.4 荧光定量PCR | 第29页 |
2.7.5 荧光定量PCR表达量的计算 | 第29页 |
2.8 数据处理 | 第29-30页 |
3 结果与分析 | 第30-46页 |
3.1 病情指数统计 | 第30-31页 |
3.2 枯萎病菌胁迫对黑籽南瓜气体交换参数的影响 | 第31-34页 |
3.2.1 对净光合速率的影响 | 第31页 |
3.2.2 对气孔导度的影响 | 第31-32页 |
3.2.3 对胞间CO2浓度的影响 | 第32页 |
3.2.4 对蒸腾速率的影响 | 第32-34页 |
3.3 枯萎病菌胁迫对黑籽南瓜叶绿素a荧光参数的影响 | 第34-38页 |
3.3.1 对光合机构潜在的PSⅡ最大光化学效率的影响 | 第34页 |
3.3.2 对开放的PSⅡ反应中心激发能捕获效率的影响 | 第34-35页 |
3.3.3 对作用光下实际PSⅡ光化学效率的影响 | 第35页 |
3.3.4 对光化学淬灭的影响 | 第35-36页 |
3.3.5 对非光化学淬灭的影响 | 第36页 |
3.3.6 对表观电子传递速率的影响 | 第36-38页 |
3.4 枯萎病菌胁迫对黑籽南瓜抗氧化酶活性的影响 | 第38-40页 |
3.4.1 对过氧化物酶活性的影响 | 第39页 |
3.4.2 对超氧化物歧化酶活性的影响 | 第39页 |
3.4.3 对过氧化氢酶活性的影响 | 第39-40页 |
3.5 枯萎病菌胁迫对黑籽南瓜氧化伤害物质含量的影响 | 第40-42页 |
3.6 枯萎病菌胁迫对黑籽南瓜NBS类抗病基因片段HQRGA2表达的影响 | 第42-46页 |
3.6.1 总RNA提取结果 | 第42页 |
3.6.2 实时荧光定量PCR | 第42-43页 |
3.6.3 NBS类抗病基因片段HQRGA2表达分析 | 第43-46页 |
4 讨论 | 第46-51页 |
4.1 黑籽南瓜枯萎病菌接种研究 | 第46页 |
4.2 枯萎病菌对黑籽南瓜气体交换参数的影响 | 第46-47页 |
4.3 枯萎病菌对黑籽南瓜叶绿素a荧光参数的影响 | 第47-48页 |
4.4 枯萎病菌对黑籽南瓜氧化伤害物质含量及抗氧化酶活性的影响 | 第48-49页 |
4.5 枯萎病菌对黑籽南瓜NBS类抗病基因片段HQRGA2表达的影响 | 第49-51页 |
5 结论 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-59页 |
附录 | 第59-61页 |
作者简历 | 第61-62页 |
致谢 | 第62-63页 |