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羧肽酶Y标记蛋白质羧基端方法的优化及其应用

中文摘要第4-6页
Abstract第6-7页
第一章 前言第11-16页
    1.1 羧肽酶Y概述第11-12页
    1.2 蛋白质水解及质谱鉴定第12-14页
    1.3 多发性骨髓瘤凋亡第14-16页
第二章 羧肽酶Y标记蛋白质C端和正向分离蛋白质C端多肽第16-36页
    2.1 实验材料第16-21页
        2.1.1 实验样品第16页
        2.1.2 实验试剂第16-17页
        2.1.3 主要试剂的配置第17-20页
        2.1.4 实验仪器第20-21页
    2.2 实验方法第21-25页
        2.2.1 甲基酯化第21页
        2.2.2 多肽和蛋白的羧基端生物素标记第21-22页
        2.2.3 SDS含量对生物素标记反应效率的影响第22页
        2.2.4 复溶缓冲液中SDS的含量对甲基酯化BL21全蛋白样品复溶的影响第22-23页
        2.2.5 SDS-PAGE、银染和胶内胰酶酶解第23页
        2.2.6 质谱样品的准备第23-24页
        2.2.7 MALDI-TOF-MS和LC-MS/MS检测第24页
        2.2.8 数据分析第24-25页
        2.2.9 生物信息学分析第25页
    2.3 结果与讨论第25-35页
        2.3.1 生物素标记最佳p H的测定第25-26页
        2.3.2 生物素标记最佳SDS浓度的测定第26-28页
        2.3.3 利用羧肽酶Y标记蛋白质C端和正向分离蛋白质羧基端多肽第28-30页
        2.3.4 利用优化后的Pro C-TEL技术鉴定复杂蛋白样品BL21全蛋白水解位点第30-34页
        2.3.5 E. coli全蛋白样品鉴定结果的生物信息学分析第34-35页
    2.4 结论第35-36页
第三章 多发性骨髓瘤OPM2细胞凋亡过程中蛋白水解的鉴定第36-47页
    3.1 实验材料第36页
        3.1.1 实验样品第36页
        3.1.2 实验试剂第36页
        3.1.3 实验仪器第36页
    3.2 实验方法第36-39页
        3.2.1 多发性骨髓瘤OPM2细胞凋亡实验第36-38页
        3.2.2 羧肽酶Y标记多发性骨髓瘤OPM2细胞全蛋白复杂样品第38-39页
        3.2.3 胶内酶解和亲和纯化生物素标记多肽第39页
        3.2.4 LC-MS/MS检测第39页
        3.2.5 数据分析第39页
    3.3 结果与讨论第39-46页
        3.3.1 多发性骨髓瘤OPM2细胞凋亡实验第39-42页
        3.3.2 OPM2凋亡诱导和生物素标记效率验证第42-44页
        3.3.3 多发性骨髓瘤OPM2细胞凋亡中蛋白水解的质谱鉴定第44-46页
    3.4 结论第46-47页
第四章 探索CPY突变体在羧肽酶标记蛋白质C端中的应用第47-64页
    4.1 实验材料和仪器第47-50页
        4.1.1 实验样品第47页
        4.1.2 实验试剂第47-48页
        4.1.3 主要试剂的配置第48-50页
        4.1.4 实验仪器第50页
    4.2 实验方法第50-58页
        4.2.1 野生型和突变体羧肽酶Y原核载体构建和单克隆筛选第50-51页
        4.2.2 野生型以及突变体羧肽酶Y的原核表达第51-52页
        4.2.3 用原核表达的野生型和突变体羧肽酶Y标记蛋白第52-53页
        4.2.4 野生型和突变体羧肽酶Y的真核表达第53-58页
    4.3 实验结果与讨论第58-62页
        4.3.1 野生型和突变体CPY的原核表达及纯化验证第58-60页
        4.3.2 用原核表达的野生型及突变体羧肽酶Y对蛋白质C端进行生物素标记第60页
        4.3.3 野生型及突变体羧肽酶Y的真核表达第60-61页
        4.3.4 野生型及突变体羧肽酶Y的真核表达第61-62页
    4.4 结论第62-64页
参考文献第64-69页
综述第69-76页
    参考文献第74-76页
攻读学位期间出版或公开发表的论著、论文第76-77页
中英语缩略词对照表第77-78页
附录第78-94页
致谢第94-95页

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