| 摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第8-11页 |
| 第一章 材料和方法 | 第11-27页 |
| 1.1 仪器与材料 | 第11-13页 |
| 1.1.1 主要仪器 | 第11页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第11-12页 |
| 1.1.3 主要溶液的配制 | 第12-13页 |
| 1.2 实验方法 | 第13-17页 |
| 1.2.1 细胞系 | 第13页 |
| 1.2.2 细胞培养、处理及转染 | 第13页 |
| 1.2.3 构建Hsc70或Lamp-2A腺病毒 | 第13-14页 |
| 1.2.4 MTT法检测细胞活性 | 第14页 |
| 1.2.5 免疫沉淀法 | 第14-15页 |
| 1.2.6 Western blot分析Aβ、Hsc70和Lamp-2A表达水平 | 第15-17页 |
| 1.3 统计学分析 | 第17-18页 |
| 1.4 主要仪器 | 第18页 |
| 1.5 主要试剂 | 第18-19页 |
| 1.6 实验动物 | 第19页 |
| 1.7 实验方法 | 第19-27页 |
| 1.7.1 将腺病毒Hsc70或Lamp-2A注入APPswe/PS1d E9双转基因小鼠脑内 | 第19-20页 |
| 1.7.2 Morris水迷宫实验 | 第20页 |
| 1.7.3 脑组织标本制备 | 第20-21页 |
| 1.7.4 溶酶体膜的制备 | 第21页 |
| 1.7.5 Western blot | 第21-24页 |
| 1.7.6 酶联免疫吸附法(ELISA)测定Aβ42水平 | 第24-25页 |
| 1.7.7 免疫组化染色 | 第25页 |
| 1.7.8 免疫荧光染色 | 第25-26页 |
| 1.7.9 Nissl染色 | 第26-27页 |
| 第二章 结果 | 第27-36页 |
| 2.1 CMA参与体外培养细胞内的Aβ降解 | 第27-28页 |
| 2.2 Aβ和体外培养细胞中Lamp-2A和Hsc70表达水平的关系 | 第28页 |
| 2.3 Lamp-2A和Hsc70对体外培养细胞中Aβ聚集的影响 | 第28-30页 |
| 2.4 APPswe/PS1d E9小鼠大脑中CMA蛋白的水平 | 第30-31页 |
| 2.5 Hsc70或Lamp-2A经腺病毒重组体向5月龄APPswe/PS1d E9小鼠脑内的有效注入 | 第31-32页 |
| 2.6 Lamp-2A或Hsc70过表达对APPswe/PS1d E9小鼠脑内Aβ沉积和神经病理的影响 | 第32-34页 |
| 2.7 Lamp-2A或Hsc70过表达对APPswe/PS1d E9小鼠认知功能的影响 | 第34-36页 |
| 第三章 讨论 | 第36-39页 |
| 结论 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-42页 |
| 综述 | 第42-61页 |
| 综述的参考文献 | 第58-61页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
