中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语/符号说明 | 第10-11页 |
前言 | 第11-13页 |
研究现状、成果 | 第11-12页 |
研究目的、方法 | 第12-13页 |
对象和方法 | 第13-25页 |
1 材料 | 第13-16页 |
1.1 主要试剂及其配制 | 第13-15页 |
1.2 主要仪器 | 第15-16页 |
1.3 实验动物及分组 | 第16页 |
2 实验方法 | 第16-25页 |
2.1 模型制作 | 第16-17页 |
2.2 模型成功评价 | 第17页 |
2.3 给药方法 | 第17页 |
2.4 神经功能行为学评价 | 第17-18页 |
2.4.1 改良Garcia实验 | 第18页 |
2.4.2 角落转向实验 | 第18页 |
2.5 脑组织含水量测定 | 第18-19页 |
2.6 血肿大小测定 | 第19页 |
2.7 流式细胞术 | 第19-20页 |
2.8 蛋白质印迹分析 | 第20-22页 |
2.9 实时聚合酶链式反应(RT-PCR) | 第22-23页 |
2.10 免疫荧光检测 | 第23-24页 |
2.11 统计学分析 | 第24-25页 |
结果 | 第25-40页 |
1 神经功能行为学评价 | 第25-27页 |
2 脑组织含水量 | 第27-28页 |
3 血肿大小的测定 | 第28-29页 |
4 血肿周围脑组织炎性因子水平 | 第29-31页 |
5 脾脏组织炎性细胞因子水平 | 第31-33页 |
6 免疫细胞数量变化 | 第33-35页 |
7 PD-L1蛋白影响CD4+ T细胞亚群的分化 | 第35-36页 |
8 PD-L1蛋白增加了紧密连接蛋白的表达水平 | 第36-37页 |
9 PD-L1蛋白抑制了脑出血后的mTOR / Akt通路 | 第37-40页 |
讨论 | 第40-43页 |
1 实验药物的选择 | 第40-41页 |
2 动物模型的选择 | 第41页 |
3 PD-L1对脑出血的疗效评价 | 第41-43页 |
结论 | 第43-44页 |
参考文献 | 第44-49页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第49-50页 |
附录 | 第50-51页 |
综述 脑出血后炎性因子及炎症抑制作用机制研究进展 | 第51-60页 |
综述参考文献 | 第56-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
个人简历 | 第61页 |