| 摘要 | 第2-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 引言 | 第8-9页 |
| 实验材料 | 第9-12页 |
| 1.1 实验细胞 | 第9页 |
| 1.2 主要试剂 | 第9页 |
| 1.3 主要仪器 | 第9-10页 |
| 1.4 液体及试剂配制 | 第10-12页 |
| 实验方法 | 第12-20页 |
| 2.1 细胞培养及分组 | 第12页 |
| 2.1.1 细胞培养 | 第12页 |
| 2.1.2 分组 | 第12页 |
| 2.2 细胞复苏和冻存 | 第12-13页 |
| 2.2.1 细胞复苏 | 第12-13页 |
| 2.2.2 细胞冻存 | 第13页 |
| 2.3 细胞传代 | 第13-14页 |
| 2.4 反转录-聚合酶链反应(RT-PCR)检测MRNA表达 | 第14-16页 |
| 2.4.1 细胞总RNA的trizol法提取 | 第14-15页 |
| 2.4.2 将总RNA从样品逆转录成cDNA | 第15-16页 |
| 2.4.3 实时定量RT-PCR | 第16页 |
| 2.5 细胞蛋白的提取、定量及WESTERN-BIOTTING检测 | 第16-18页 |
| 2.5.1 细胞总蛋白的提取 | 第16-17页 |
| 2.5.2 配制浓缩胶和分离胶 | 第17页 |
| 2.5.3 上样及SDS-PAGE凝胶电泳 | 第17页 |
| 2.5.4 转膜 | 第17-18页 |
| 2.5.5 封闭 | 第18页 |
| 2.5.6 孵育抗体 | 第18页 |
| 2.5.7 显色 | 第18页 |
| 2.5.8 条带分析 | 第18页 |
| 2.6 透射电镜观察 | 第18-19页 |
| 2.7 统计学方法 | 第19-20页 |
| 实验结果 | 第20-23页 |
| 3.1 OX-LDL诱导HUVECS自噬的电镜表现 | 第20页 |
| 3.2 OX-LDL对HUVECS中LC3、P62表达的影响 | 第20-21页 |
| 3.3 OX-LDL对HUVECS中AKT/MTOR/P70S6K信号通路表达的影响 | 第21-23页 |
| 讨论 | 第23-25页 |
| 结论 | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-29页 |
| 综述 | 第29-41页 |
| 综述的参考文献 | 第35-41页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第41-42页 |
| 缩略词表 | 第42-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
