| 缩略词表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-10页 |
| ABSTRACT | 第10-13页 |
| 前言 | 第14-16页 |
| 第一章 稳定表达狂犬病病毒糖蛋白膜外区的细胞系的建立 | 第16-32页 |
| 1 材料与方法 | 第16-27页 |
| 1.1 材料 | 第16-19页 |
| 1.2 方法 | 第19-27页 |
| 2 结果 | 第27-30页 |
| 2.1 重组质粒pCMV-Ge的双酶切鉴定 | 第27-28页 |
| 2.2 HEK293细胞对zeocin敏感性的测定 | 第28页 |
| 2.3 阳性克隆的筛选 | 第28页 |
| 2.4 表达产物的ELISA检测 | 第28-29页 |
| 2.5 表达产物的Western Blot检测 | 第29页 |
| 2.6 细胞系的表达稳定性 | 第29-30页 |
| 3 讨论 | 第30-31页 |
| 3.1 关于表达系统和表达载体的选择 | 第30页 |
| 3.2 关于目的基因长短的选择 | 第30-31页 |
| 3.3 关于目的蛋白的表达和收集 | 第31页 |
| 4 小结 | 第31-32页 |
| 第二章 RABV阻断ELISA抗体检测体系的建立 | 第32-46页 |
| 1 材料与方法 | 第33-37页 |
| 1.1 材料 | 第33-34页 |
| 1.2 方法 | 第34-37页 |
| 2 结果 | 第37-43页 |
| 2.1 抗原包被液的选择 | 第37-38页 |
| 2.2 抗原包被的时间和温度条件 | 第38页 |
| 2.3 封闭液的选择 | 第38-39页 |
| 2.4 抗原包被浓度与抗体稀释倍数的确定 | 第39-40页 |
| 2.5 酶标抗体的选择 | 第40页 |
| 2.6 血清反应条件的优化 | 第40-41页 |
| 2.7 洗液的选择 | 第41页 |
| 2.8 显色条件 | 第41页 |
| 2.9 稳定剂的选择 | 第41-42页 |
| 2.10 临界值的确定 | 第42页 |
| 2.11 批间和批内差异评价 | 第42-43页 |
| 2.12 特异性评价 | 第43页 |
| 3 讨论 | 第43-45页 |
| 3.1 关于阻断ELISA方法的确定 | 第43-44页 |
| 3.2 关于试验中各步条件的优化 | 第44-45页 |
| 3.3 试验中的问题 | 第45页 |
| 4 小结 | 第45-46页 |
| 第三章 RABV阻断ELISA抗体检测方法的应用 | 第46-52页 |
| 1 材料与方法 | 第46-47页 |
| 1.1 材料 | 第46页 |
| 1.2 方法 | 第46-47页 |
| 2 结果 | 第47-49页 |
| 2.1 两种方法对364份临床样品的检测结果比较 | 第47页 |
| 2.2 ROC分析 | 第47-49页 |
| 3 讨论 | 第49-50页 |
| 3.1 关于中和试验阴性样品在ELISA试验中出现假阳性的检测结果分析 | 第49页 |
| 3.2 关于中和试验阳性样品在ELISA试验中出现假阴性的检测结果分析 | 第49页 |
| 3.3 与同类商品试剂盒数据比较分析 | 第49-50页 |
| 3.4 关于本方法相应产品的研制展望 | 第50页 |
| 3.5 关于本方法适用性的展望 | 第50页 |
| 4 小结 | 第50-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-56页 |
| 个人简历 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
