| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 引言 | 第11-20页 |
| 1.1 酪蛋白合成及调控 | 第11-15页 |
| 1.1.1 酪蛋白的生物学功能 | 第11页 |
| 1.1.2 酪蛋白的合成 | 第11-12页 |
| 1.1.3 调控酪蛋白合成的因素 | 第12-15页 |
| 1.2 蛋氨酸对牛奶中酪蛋白合成的作用 | 第15-16页 |
| 1.3 小肽对牛奶中酪蛋白合成的作用 | 第16-17页 |
| 1.3.1 影响乳腺组织对小肽利用的因素 | 第16页 |
| 1.3.2 乳腺组织对小肽的摄取机制 | 第16-17页 |
| 1.4 研究的目的、意义及内容 | 第17-19页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第17-18页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第18-19页 |
| 1.5 论文总体技术路线 | 第19-20页 |
| 2 试验研究 | 第20-47页 |
| 2.1 蛋氨酸寡肽的浓度及培养时间对奶牛乳腺上皮细胞活力及酪蛋白合成相关基因表达的影响 | 第20-39页 |
| 2.1.1 试验材料与方法 | 第20-33页 |
| 2.1.2 结果 | 第33-36页 |
| 2.1.3 讨论 | 第36-38页 |
| 2.1.4 小结 | 第38-39页 |
| 2.2 适宜浓度游离蛋氨酸和蛋氨酸寡肽对奶牛乳腺上皮细胞酪蛋白基因表达的影响 | 第39-41页 |
| 2.2.1 试验材料与方法 | 第39-40页 |
| 2.2.2 结果 | 第40页 |
| 2.2.3 讨论 | 第40-41页 |
| 2.2.4 小结 | 第41页 |
| 2.3 蛋氨酸寡肽代替不同比例游离蛋氨酸对奶牛乳腺上皮细胞酪蛋白合成相关基因表达的影响 | 第41-47页 |
| 2.3.1 试验材料与方法 | 第41-42页 |
| 2.3.2 结果 | 第42-45页 |
| 2.3.3 讨论 | 第45-46页 |
| 2.3.4 小结 | 第46-47页 |
| 3 论文的总体讨论与结论 | 第47-49页 |
| 3.1 总体讨论 | 第47-48页 |
| 3.1.1 适宜蛋氨酸寡肽浓度的确定 | 第47页 |
| 3.1.2 适宜蛋氨酸寡肽代替游离蛋氨酸比例的确定 | 第47-48页 |
| 3.2 总体结论 | 第48-49页 |
| 3.2.1 酪蛋白基因表达与Op-Met浓度在当细胞培养时间为24h,且Op-Met浓度达到60 μ g/mL时,对BMECs活力及酪蛋白基因表达有促进作用 | 第48页 |
| 3.2.2 在培养基中加入相同适宜浓度的F-Met或Op-Met时,添加Met-Met的适宜培养的条件下酪蛋白基因表达量最高 | 第48页 |
| 3.2.3 用Op-Met代替不同比例的F-Met比单独加入AA或小肽时酪蛋白基因表达量更高,最适宜的代替比例为Op-Met代替15%的F-Met | 第48-49页 |
| 4 论文创新点 | 第49-50页 |
| 5 对未来研究的展望 | 第50-51页 |
| 5.1 小肽是奶牛机体内循环的重要营养物质,对奶牛生产性能有巨大的影响。小肽在奶牛乳腺组织中的摄取机制还不明确,同时小肽对乳蛋白、乳脂肪和乳糖合成的调控是否存在相互影响也需要进一步探讨 | 第50页 |
| 5.2 本试验没有对三肽以上的小肽进行深入研究,而且对于其他AA组成的寡肽也值得继续深入的探究。同时通过分子生物学技术手段研究小肽作用的机制后,应该将研究结果应用到奶牛生产实践中,为提高奶牛乳蛋白的含量提供相应的理论依据 | 第50页 |
| 5.3 PepTs的发现为小肽进入组织细胞提供了通路,在未来对动物医疗和营养摄入等方面可以利用其转运特性,在畜牧业发展过程中使动物创造更大的经济价值 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-61页 |
| 作者简介 | 第61页 |
