| 中文摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 英文缩略语表 | 第9-10页 |
| 前言 | 第10-11页 |
| 第一章 大叶蛇葡萄总黄酮提取物对不同肿瘤细胞株活性的筛选研究 | 第11-34页 |
| 1 仪器与材料 | 第11-13页 |
| 1.1 仪器 | 第11页 |
| 1.2 药品与试剂 | 第11-12页 |
| 1.3 细胞株 | 第12页 |
| 1.4 试剂的配制 | 第12-13页 |
| 2 实验方法 | 第13-15页 |
| 2.1 样品的制备 | 第13页 |
| 2.2 储备液的制备 | 第13页 |
| 2.3 细胞的培养与传代 | 第13页 |
| 2.4 细胞的冻存 | 第13页 |
| 2.5 细胞的复苏 | 第13-14页 |
| 2.6 MTT法筛选大叶蛇葡萄总黄酮提取物的抗肿瘤活性 | 第14-15页 |
| 3 实验结果 | 第15-31页 |
| 3.1 不同浓度药物在不同时间段对不同细胞的增殖抑制作用 | 第15-29页 |
| 3.2 相同药物浓度在不同时间段对细胞的增殖抑制作用 | 第29-30页 |
| 3.3 总黄酮提取物对Hela、A549、MCF-7、HepG2、A2780和SW620细胞作用的IC_(50) | 第30-31页 |
| 4 讨论 | 第31-32页 |
| 5 本章小结 | 第32-34页 |
| 第二章 大叶蛇葡萄总黄酮提取物对MCF-7细胞凋亡的影响研究 | 第34-47页 |
| 1 实验材料 | 第34-35页 |
| 1.1 仪器 | 第34页 |
| 1.2 药品试剂与细胞 | 第34页 |
| 1.3 试液的配制 | 第34-35页 |
| 2 实验方法 | 第35-37页 |
| 2.1 Hoechst33258荧光染色法检测细胞形态变化 | 第35页 |
| 2.2 Annexin V-FITC/PI双染法检测细胞凋亡率 | 第35-36页 |
| 2.3 PI单染法检测细胞周期 | 第36-37页 |
| 3 实验结果 | 第37-44页 |
| 3.1 大叶蛇葡萄总黄酮提取物对MCF-7细胞形态变化的影响 | 第37-40页 |
| 3.2 Annexin V-FITC/PI双染法检测细胞凋亡率 | 第40-42页 |
| 3.3 PI单染检测MCF-7细胞周期 | 第42-44页 |
| 4 讨论 | 第44-46页 |
| 4.1 MCF-7细胞的形态学变化 | 第44-45页 |
| 4.2 AnnexinV-FITC/PI双染法测定细胞凋亡率 | 第45页 |
| 4.3 PI染色法检测细胞周期分布 | 第45-46页 |
| 5 本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 大叶蛇葡萄总黄酮提取物诱导MCF-7细胞凋亡机制的研究 | 第47-62页 |
| 1 仪器与材料 | 第47-48页 |
| 1.1 仪器 | 第47页 |
| 1.2 药品与试剂 | 第47-48页 |
| 1.3 储备液的配制 | 第48页 |
| 2 实验方法 | 第48-52页 |
| 2.1 Rh-123染色检测线粒体膜电位的变化 | 第48页 |
| 2.2 Western blot蛋白印迹法检测相关凋亡蛋白的表达 | 第48-52页 |
| 3 实验结果 | 第52-58页 |
| 3.1 大叶蛇葡萄总黄酮提取物对细胞线粒体膜电位的影响 | 第52-55页 |
| 3.2 相关凋亡蛋白表达结果 | 第55-58页 |
| 4 讨论 | 第58-60页 |
| 4.1 Rh-123检测细胞线粒体膜电位的变化 | 第58-59页 |
| 4.2 Western blot蛋白免疫印迹法检测相关凋亡蛋白的表达 | 第59-60页 |
| 5 本章小结 | 第60-62页 |
| 结语与创新 | 第62-63页 |
| 附录 | 第63-73页 |
| 一、攻读硕士学位期间已发表及待发表论文 | 第63-64页 |
| 二、文献综述 | 第64-73页 |
| 参考文献 | 第73-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
