| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 目录 | 第7-10页 |
| 縮略词表 | 第10-11页 |
| 第一章 ：文献综述 | 第11-35页 |
| ·MHC分子 | 第11-15页 |
| ·MHC分子的结构与组织分布 | 第11-14页 |
| ·MHC结构及多态性 | 第14-15页 |
| ·非经典MHCⅠ分子 | 第15页 |
| ·CD1分子概述 | 第15-22页 |
| ·CD1分子结构与功能 | 第16-17页 |
| ·CD1分子类型及特性 | 第17-22页 |
| ·CD1起源及进化 | 第22-34页 |
| ·MHC旁系同源基因组及其起源 | 第23-26页 |
| ·CD1的起源和历史 | 第26-28页 |
| ·哺乳动物和鸡的CD1 | 第28-34页 |
| ·本研究的意义 | 第34-35页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第35-57页 |
| ·技术路线图 | 第35-36页 |
| ·实验动物 | 第36页 |
| ·实验材料及试剂 | 第36-39页 |
| ·主要菌株、药品和试剂 | 第36页 |
| ·实验所用试剂盒 | 第36-37页 |
| ·培养基的配制 | 第37页 |
| ·常用缓冲液及试剂配制 | 第37-38页 |
| ·抗体 | 第38页 |
| ·实验仪器与设备 | 第38-39页 |
| ·实验方法 | 第39-53页 |
| ·DNA提取(酚仿三步法) | 第39页 |
| ·DNA提取(试剂盒法) | 第39-40页 |
| ·RNA提取(TRIzol法) | 第40页 |
| ·RNA提取(试剂盒法) | 第40-41页 |
| ·反转录(M-MLV) | 第41页 |
| ·3' RACE | 第41-42页 |
| ·5'RACE | 第42-44页 |
| ·常用PCR反应 | 第44-46页 |
| ·克隆转化 | 第46-49页 |
| ·Southern blotting | 第49-53页 |
| ·定量PCR方法 | 第53页 |
| ·生物信息学研究方法 | 第53-57页 |
| ·数据库及常用生物分析软件 | 第53-54页 |
| ·CD1同源分子的获取 | 第54页 |
| ·分类树的构建方法 | 第54-55页 |
| ·系统发生树的构建方法 | 第55-57页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第57-104页 |
| ·哺乳动物CD1分析 | 第57-70页 |
| ·哺乳动物CD1基因的获取 | 第57-66页 |
| ·哺乳动物CD1系统进化分析 | 第66-70页 |
| ·鸟类CD1分析 | 第70-84页 |
| ·鸟类CD1基因的获取 | 第70-75页 |
| ·鸟类CD1系统进化分析及其亚型的确定 | 第75-76页 |
| ·鸟类CD1分子特点 | 第76-79页 |
| ·鸭CD1基因的Southern blotting鉴定 | 第79-80页 |
| ·鸭CD1基因位置的验证 | 第80-81页 |
| ·鸟类CD1基因同线性分析 | 第81-84页 |
| ·爬行类CD1分析 | 第84-98页 |
| ·CD1基因在爬行动物中的鉴定 | 第84-87页 |
| ·爬行动物CD1系统进化分析 | 第87-88页 |
| ·鳄鱼、蜥蜴CD1的拷贝数 | 第88-89页 |
| ·鳄鱼CD1位置的验证 | 第89-90页 |
| ·鳄鱼中CD1的可变剪接 | 第90-92页 |
| ·暹罗鳄CD1的组织表达 | 第92-93页 |
| ·爬行类CD1分子特点 | 第93-95页 |
| ·爬行类CD1同线性分析 | 第95-98页 |
| ·CD1的进化分析 | 第98-101页 |
| ·爬行类、鸟类及哺乳类CD1系统发生分析 | 第98-100页 |
| ·爬行类、鸟类及哺乳类CD1、MHCⅠ和MHCⅡ系统发生分析 | 第100-101页 |
| ·分析与讨论 | 第101-104页 |
| 第四章 结论 | 第104-105页 |
| 附录 | 第105-119页 |
| 附录Ⅰ 引物表 | 第105-109页 |
| 附录Ⅱ 氨基酸序列号 | 第109-112页 |
| 附录Ⅲ 可变剪接分析 | 第112-118页 |
| 附录Ⅳ 氨基酸同源性比对 | 第118-119页 |
| 参考文献 | 第119-127页 |
| 致谢 | 第127-129页 |
| 个人简历 | 第129页 |