| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-14页 |
| 中英文缩略词表 | 第14-15页 |
| 第1章 引言 | 第15-17页 |
| 第2章 材料与方法 | 第17-29页 |
| ·材料 | 第17-19页 |
| ·动物 | 第17页 |
| ·主要试剂 | 第17-18页 |
| ·主要仪器 | 第18-19页 |
| ·研究方法 | 第19-28页 |
| ·主要液体的配制 | 第19-21页 |
| ·原代肝星状细胞的分离提取 | 第21-22页 |
| ·原代肝星状细胞的鉴定 | 第22-23页 |
| ·实验分组及药物处理 | 第23-24页 |
| ·Western Blot检测NOX亚基gp91~(phox)、p67~(phox)、p22~(phox)及 α-SMA的蛋白表达 | 第24-25页 |
| ·RT-qPCR检测NOX亚基Rac1、p22~(phox)及I型胶原的m RNA表达 | 第25-28页 |
| ·统计学处理 | 第28-29页 |
| 第3章 结果 | 第29-38页 |
| ·大鼠原代HSC活性、纯度、静息及活化状态的鉴定 | 第29-30页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中NOX亚基gp91~(phox)、p67~(phox)及p22~(phox)蛋白表达的影响 | 第30-34页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中gp91~(phox)蛋白表达的影响 | 第30-31页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中p67~(phox)蛋白表达的影响 | 第31-32页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中p22~(phox)蛋白表达的影响 | 第32-34页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中NOX亚基Rac1及p22~(phox) mRNA表达的影响 | 第34-35页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中Rac1mRNA表达的影响 | 第34页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中p22~(phox)mRNA表达的影响 | 第34-35页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中 α-SMA表达的影响 | 第35-36页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中I型胶原m RNA表达的影响 | 第36-38页 |
| 第4章 讨论 | 第38-42页 |
| ·NADPH氧化酶在静止型HSC活化中的作用 | 第38页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中NOX亚基表达的影响 | 第38-39页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中 α-SMA表达的影响 | 第39-40页 |
| ·熊果酸对静止型HSC活化过程中I型胶原合成的影响 | 第40-42页 |
| 第5章 结论与展望 | 第42-43页 |
| ·结论 | 第42页 |
| ·展望 | 第42-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 附图 | 第47-51页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第51-52页 |
| 综述(一) | 第52-59页 |
| 参考文献 | 第56-59页 |
| 综述(二) | 第59-68页 |
| 参考文献 | 第64-68页 |
