| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-6页 |
| 英文缩略词表 | 第6-10页 |
| 第一章 引言 | 第10-16页 |
| ·糖尿病成因及其治疗的基本情况 | 第10页 |
| ·探索新的糖尿病治疗方法的研究现状 | 第10-11页 |
| ·胰腺β细胞再生的研究现状 | 第11-13页 |
| ·胰腺的结构与发育 | 第11-12页 |
| ·胰腺β细胞再生的机理与再生来源的研究现状 | 第12-13页 |
| ·胰腺再生的动物模型 | 第13-14页 |
| ·通过胆总管逆向注射腺病毒标记胰管细胞 | 第14页 |
| ·腺病毒 | 第14页 |
| ·胰管细胞标记的可行性 | 第14页 |
| ·本论文的目的和意义 | 第14-16页 |
| 第二章 材料与方法 | 第16-34页 |
| ·主要实验试剂 | 第16-19页 |
| ·主要实验材料 | 第19页 |
| ·手术器械 | 第19-20页 |
| ·仪器与设备 | 第20-21页 |
| ·动物 | 第21页 |
| ·腺病毒的扩增 | 第21页 |
| ·real time RT-PCR中用到的引物探针 | 第21-22页 |
| ·主要实验方法 | 第22-33页 |
| ·小鼠模型 | 第22-26页 |
| ·模型的检测 | 第26-33页 |
| ·数据分析 | 第33-34页 |
| 第三章 结果与分析 | 第34-57页 |
| ·小鼠STZ模型的建立与分析 | 第34-40页 |
| ·STZ合适剂量的选择 | 第34-35页 |
| ·STZ作用后小鼠体重与空腹血糖的变化 | 第35页 |
| ·STZ作用后小鼠胰腺的病理观察 | 第35-36页 |
| ·STZ后小鼠胰岛形态和数量分析 | 第36-39页 |
| ·STZ小鼠胰岛11151、Ki67、N9113 的相对表达水平检 | 第39页 |
| ·小结 | 第39-40页 |
| ·50%胰腺部分切除模型的建立与分析 | 第40-43页 |
| ·小鼠胰腺结构的认识 | 第40-41页 |
| ·50%胰腺切除模型的分析 | 第41-43页 |
| ·90%胰腺部分切除模型的建立与分析 | 第43-45页 |
| ·术后小鼠胰腺的病理观察 | 第43页 |
| ·术后小鼠胰腺中11151 和PDX-1 的相对表达水平检测 | 第43-45页 |
| ·小结 | 第45页 |
| ·小鼠胰管接扎模型的建立与分析 | 第45-49页 |
| ·小鼠胰管结构的认识 | 第45-46页 |
| ·PDL后小鼠胰腺的病理观察 | 第46-47页 |
| ·小结 | 第47-49页 |
| ·胆总管逆向注射腺病毒标记胰管 | 第49-50页 |
| ·胰管标记技术在幼鼠模型上的应用 | 第50-56页 |
| ·在胰管标记后的胰腺中寻找EGFP阳性的胰岛 | 第50-52页 |
| ·对EGFP阳性的绿色胰岛进行BrdU标记分析 | 第52-54页 |
| ·对EGFP阳性的绿色胰岛进行Ki67 和端粒长度的检测 | 第54-55页 |
| ·小结 | 第55-56页 |
| ·胰管标记技术应用于再生模型 | 第56-57页 |
| 第四章 讨论 | 第57-62页 |
| ·模型对胰腺再生研究的重要性 | 第57页 |
| ·刺激再生的主要因素 | 第57-59页 |
| ·胆总管逆向注射腺病毒技术的优缺点 | 第59-60页 |
| ·出生后小鼠的胰岛新生 | 第60-61页 |
| ·小鼠胰腺再生与胰腺干细胞/祖细胞 | 第61-62页 |
| 第五章 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 在校期间科研情况 | 第74页 |
| 个人简历 | 第74页 |
