| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-13页 |
| 1 引言 | 第13-19页 |
| ·类风湿关节炎的发病机制 | 第13-15页 |
| ·T 淋巴细胞在 RA 发病机制中的作用 | 第13-15页 |
| ·FLS 在 RA 发病机制中的作用 | 第15页 |
| ·缓解疾病的抗类风湿性药物研究进展 | 第15-16页 |
| ·研究目的和意义 | 第16-19页 |
| 2 人滑膜细胞培养鉴定及生长性状观测 | 第19-33页 |
| ·实验材料 | 第19-21页 |
| ·实验组织来源 | 第19页 |
| ·主要实验试剂 | 第19页 |
| ·主要实验仪器 | 第19-20页 |
| ·主要试剂配制 | 第20-21页 |
| ·实验方法 | 第21-24页 |
| ·FLS 原代培养方法 | 第21页 |
| ·FLS 传代方法 | 第21-22页 |
| ·FLS 冻存及复苏 | 第22页 |
| ·FLS 鉴定 | 第22-23页 |
| ·FLS 的生长性状的检测 | 第23-24页 |
| ·统计学方法 | 第24页 |
| ·实验结果 | 第24-30页 |
| ·倒置显微镜下观察 FLS 形态及生长情况 | 第24-25页 |
| ·流式细胞仪检测 FLS 细胞表面标记抗原 | 第25-28页 |
| ·FLS 的生长性状的检测 | 第28-30页 |
| ·讨论 | 第30-33页 |
| 3 苯并噻唑衍生物抗细胞增殖活性筛选 | 第33-53页 |
| ·实验材料 | 第33-41页 |
| ·主要实验材料 | 第33-37页 |
| ·主要实验试剂 | 第37-38页 |
| ·主要实验器材 | 第38页 |
| ·主要试剂的配制 | 第38-41页 |
| ·实验方法 | 第41-44页 |
| ·人 T 细胞的分离及纯化 | 第41-42页 |
| ·人原代 FLS 分离及培养 | 第42页 |
| ·流式细胞术检测化合物抗 T 细胞增殖活性 | 第42-43页 |
| ·CCK-8 检测 DMSO 不同浓度对 FLS 增殖影响 | 第43页 |
| ·CCK-8 检测化合物抗 FLS 增殖活性 | 第43页 |
| ·统计学方法 | 第43-44页 |
| ·实验结果 | 第44-48页 |
| ·DMSO 对 FLS 增殖影响 | 第44页 |
| ·苯并噻唑衍生物抗细胞增殖活性 | 第44-47页 |
| ·已知阳性药物抗 FLS 增殖活性 | 第47-48页 |
| ·讨论 | 第48-53页 |
| 4 苯并噻唑衍生物 K75 对 FLS 的细胞因子分泌影响 | 第53-70页 |
| ·实验材料 | 第53-56页 |
| ·实验组织来源 | 第53页 |
| ·苯并噻唑化合物 K75 | 第53页 |
| ·引物信息 | 第53页 |
| ·主要实验试剂 | 第53-54页 |
| ·主要实验设备及耗材 | 第54-55页 |
| ·主要试剂的配制 | 第55-56页 |
| ·实验方法 | 第56-60页 |
| ·人原代 FLS 分离及培养 | 第56页 |
| ·酶联方法检测 IL-1Ra 体系优化 | 第56-57页 |
| ·qPCR 方法检测 FLS 目的基因表达 | 第57-59页 |
| ·FLSIL-1Ra 的 mRNA 表达及蛋白质分泌时相点检测 | 第59-60页 |
| ·检测 K75 与刺激剂对细胞因子 IL-1Ra 的分泌影响 | 第60页 |
| ·统计学方法 | 第60页 |
| ·实验结果 | 第60-67页 |
| ·酶联方法检测细胞分泌 IL-1Ra 条件优化 | 第60-62页 |
| ·qPCR 方法检测 18sRNA 和 IL-1Ra 体系优化 | 第62-65页 |
| ·IL-1Ra 在 FLS 中 mRNA 表达及蛋白质分泌时相点检测 | 第65-67页 |
| ·K75 与刺激剂对细胞因子 IL-1Ra 的分泌影响 | 第67页 |
| ·讨论 | 第67-70页 |
| 5 全文总结 | 第70-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-77页 |
| 个人简历、在校期间发表的学术论文及取得的研究成果 | 第77页 |
