| 中文摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第一章 引言 | 第10-13页 |
| 第二章 材料与方法 | 第13-26页 |
| ·实验动物 | 第13页 |
| ·新生期母爱剥夺（NMD）模型建立 | 第13页 |
| ·实验仪器 | 第13页 |
| ·造模方法 | 第13页 |
| ·腹壁撤回反射(Abdominal Withdrawal Reflex，AWR) 评分检测痛阈 | 第13-14页 |
| ·实验仪器 | 第13页 |
| ·实验方法 | 第13-14页 |
| ·给药方法 | 第14页 |
| ·实验用药 | 第14页 |
| ·Western Blotting 检测蛋白表达 | 第14-16页 |
| ·实验试剂 | 第14-15页 |
| ·实验仪器 | 第15-16页 |
| ·实验方法 | 第16页 |
| ·急性分离 DRG 神经元和全细胞膜片钳实验 | 第16-23页 |
| ·实验试剂 | 第16-17页 |
| ·实验仪器 | 第17-18页 |
| ·荧光染料 DiI 标记肠相关 DRG 神经元 | 第18页 |
| ·急性分离 DRG 神经元 | 第18-19页 |
| ·拉制玻璃微电极 | 第19页 |
| ·全细胞膜片钳记录 | 第19-22页 |
| ·神经元兴奋性记录 | 第22-23页 |
| ·实时 PCR 方法检测 NaV1.8 表达变化 | 第23-25页 |
| ·T13–L2 DRG 总 RNA 的提取 | 第23页 |
| ·cDNA 的合成 | 第23页 |
| ·实时 PCR 检测 NaV1.8 基因 mRNA 表达 | 第23-25页 |
| ·CBS 和 NaV1.8 的免疫荧光 | 第25-26页 |
| 第三章 实验结果 | 第26-49页 |
| ·钠通道的可塑性在 NMD 诱发的内脏痛过敏中的作用 | 第26-36页 |
| ·NMD 明显增加大鼠对结肠扩张的敏感性 | 第26-27页 |
| ·全细胞膜片钳记录发现 NMD 使肠相关的背根神经节神经元兴奋性增加 | 第27-31页 |
| ·NMD 使肠相关的背根神经节神经元 TTX 不敏感钠电流密度显著增加 | 第31-32页 |
| ·NMD 使肠相关 DRG 神经元 TTX-R 钠通道激活曲线左移 | 第32-33页 |
| ·NMD 显著缩短 TTX-R 钠通道的激活时间 | 第33-34页 |
| ·NMD 可以显著增加肠特异 DRG 神经元中 NaV1.8 的表达 | 第34-36页 |
| ·CBS-H_2S 信号系统在钠通道可塑性中的调节作用 | 第36-49页 |
| ·CBS 受体拮抗剂 AOAA 可以显著翻转 NMD 诱导的内脏痛过敏 | 第36-38页 |
| ·AOAA 可以显著降低 NMD 大鼠肠 DRG 神经元中 NaV1.8 的表达 | 第38-39页 |
| ·AOAA 可以显著降低 NMD 大鼠肠相关 DRG 神经元的 TTX-R 钠通道的电流密度 | 第39-40页 |
| ·CBS 的拮抗剂 AOAA 使 NMD 大鼠 TTX-R 钠通道的激活曲线右移 | 第40-41页 |
| ·AOAA 可以显著降低 NMD 大鼠肠相关 DRG 神经元的兴奋性 | 第41-43页 |
| ·H_2S 的供体 NaHS 可以显著增加正常大鼠肠相关 DRG 神经元的兴奋性 | 第43-45页 |
| ·NaHS 可以显著增加正常大鼠肠相关 DRG 神经元的 TTX-R 钠通道的电流密度 | 第45-46页 |
| ·NaHS 可以使得正常大鼠肠相关 DRG 神经元的 TTX-R 钠通道的激活曲线左移 | 第46-47页 |
| ·PKA 抑制剂 H-89 阻断 NaHS 引起正常大鼠的钠电流密度的增加 | 第47-49页 |
| 第四章 讨论 | 第49-53页 |
| 参考文献 | 第53-61页 |
| 综述 | 第61-77页 |
| Reference | 第70-77页 |
| 攻读硕士学位期间公开发表的论文 | 第77-79页 |
| 致谢 | 第79-83页 |
